دوره 8، شماره 16 - ( تابستان 1396 )
جلد 8 شماره 16 صفحات 182-177 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
(2017). Association of Genetic Variation in Exon 1 and 3 of FSHB Gene with Litter Size in Baluchi Sheep. Res Anim Prod. 8(16), 177-182. doi:10.29252/rap.8.16.177
URL: http://rap.sanru.ac.ir/article-1-820-fa.html
URL: http://rap.sanru.ac.ir/article-1-820-fa.html
قلی زاده محسن، نجفی مجتبی. ارتباط چند شکلی های آللی اگزون یک و سه ژن FSHB با صفت چندقلوزایی در گوسفند بلوچی
پژوهشهاي توليدات دامي 1396; 8 (16) :182-177 10.29252/rap.8.16.177
چکیده: (3538 مشاهده)
هدف از این پژوهش بررسی ارتباط فرمهای مختلف آللی در اگزون اول و سوم ژن FSHB با صفت چند قلوزایی در گوسفند بلوچی بود. نمونههای خون به طور تصادفی از 141 راس گوسفند نژاد بلوچی جمعآوری، DNA به روش نمکی بهینه یافته استخراج و دو قطعه 220 جفت بازی از اگزون یک و 427 جفت بازی از اگزون سه با استفاده از واکنشهای زنجیرهای پلی مراز تکثیر شدند. به منظور تعیین ژنوتیپ از دو روش PCR-SSCP و توالییابی DNA استفاده شد. بررسی ژلهای اکریل آمید نشان داد که اگزون سوم ژن FSHB در جمیعت مورد مطالعه یک شکل بود. این مطالعه، منجر به شناسایی هفت الگوی باندی برای اگزون یک این ژن شد. برای تأیید نتایج SSCP، از هر الگو یک نمونه جهت تعیین توالی استفاده شد. نتایج تعیین توالی سه جهش را در اگزون شماره یک شناسایی نمود که منجر به تشکیل هفت الگوی مختلف باندی شد. بررسی ارتباط الگوهای شناسایی شده با صفات مورد مطالعه نشان داد که ناحیه مورد مطالعه به طور معنیداری (5/0P <) تعداد کل برهها و میانگین تعداد برهها را در طول 4 شکم تحت تأثیر قرار میدهد. همچنین ارتباط این ناحیه با چند قلوزایی در شکم دوم معنیدار (5/0P <) بود که در مقایسه با الگوی A، الگوی E بیشترین تعداد بره (88/1( و الگویB کمترین تعداد بره را در این شکم به خود اختصاص داد. با نتایج این پژوهش و بررسی بیشتر در جمعیت دیگر میتوان این جایگاه را به عنوان ژنی کاندیدا در برنامههای اصلاح نژادی در نظر گرفت.
فهرست منابع
1. An, X.P., D. Han, J.X. Hou, G. Li, Y.N. Wang, L. Li, G.Q. Zhu, J.G. Wang, Y.X. Song and B.Y. Cao. 2010. Polymorphism of exon 2 of FSHβ gene and its relationship with reproduction performance in two goat breeds. Agricultural Sciences in China, 9: 880-886. [DOI:10.1016/S1671-2927(09)60167-X]
2. Artimo, P., M.J. onnalagedda, K. Arnold, D. Baratin, G. Csardi and E. DeCastro. 2012. ExPASy: SIB bioinformatics resource portal. Nucleic Acids Research, 40: 597-603. [DOI:10.1093/nar/gks400]
3. Bennett, G.L. and K.A. Leymaster. 1989. Integration of ovulation rate, potential embryonic viability and uterine capacity into a model of litter size in swine. Journal of Animal Science, 67: 1230-1241. [DOI:10.2527/jas1989.6751230x]
4. Byun, S.O., Q. Fang, H. Zhou and J.G.H. Hickford. 2009. An effective method for silver-staining DNA in large numbers of polyacrylamide gels. Analytical Biochemistry, 385: 174-175. [DOI:10.1016/j.ab.2008.10.024]
5. Fan, Q.R. and W.A. Hendrickson. 2005. Structure of human follicle-stimulating hormone in complex with its receptor. Nature, 433: 269-277. [DOI:10.1038/nature03206]
6. Farhadi, A., V. Genualdo, A. Perucatti, S.H. Hafezian, G. Rahimi-Mianji, L. De Lorenzi, P. Parma, L. Iannuzzi and A. Iannuzzi. 2013. Comparative FISH mapping of BMPR1B, BMP15 and GDF9 fecundity genes on cattle, river buffalo, sheep and goat chromosomes. Journal of Genetics, 92: 595-597. [DOI:10.1007/s12041-013-0301-8]
7. Fox, K.M., J.A. Dias and P. Van Roey. 2001. Threedimensional structure of human follicle-stimulating hormone. MolecularEndocrinoligy, 15: 378-389. [DOI:10.1210/mend.15.3.0603]
8. Galloway, S.M., K.P. McNatty, L.M. Cambridge, M.P.E. Laitinen, J.L. Juengel, S. Jokiranta, R.J. McLaren, K. Luiro, K.G. Dodds, G.W. Montgomery, A.E. Beattie, G.H. Davis and O. Ritvos. 2000. Mutations in an oocyte-derived growth factor gene (BMP15) cause increased ovulation rate and infertility in a dosage-sensitive manner. Nature Genetics, 25:279-283. [DOI:10.1038/77033]
9. Gholizadeh, M., G. Rahimi-mianji, A. Nejati-javaremi, D.J. De Koning and E. Jonas. 2015. Genomewide association study to detect QTL for twinning rate in Baluchi sheep. Journal of Genetics, 93: 489-493. [DOI:10.1007/s12041-014-0372-1]
10. Hall, T.A. 1999. BioEdit: a user-friendly biological sequence alignment editor and analysis program for Windows 95/98/NT. Nucleic Acids Symposium Series, 41: 95-98.
11. Hediger, R., S.E. Johnson and DJ. Hetzel. 1991. Localization of the beta-subunit of follicle stimulating hormone in cattle and sheep by in situ hybridization. Animal Genetics, 22: 237-44. [DOI:10.1111/j.1365-2052.1991.tb00673.x]
12. Hanrahan, J.P., S.M. Gregan, P. Mulsant, M. Mullen, G.H. Davis, R. Powell and S. Galloway. 2004. Mutations in the genes for oocyte derived growth factors GDF9 and BMP15 are associated with both increased ovulation rate and sterility in Cambridge and Belclare sheep (Ovisaries). Biology Reproduction, 70: 900-909. [DOI:10.1095/biolreprod.103.023093]
13. Kimchi-Sarfaty, C., J.M. Oh, I.W. Kim, Z.E. Sauna, A.M. Calcagno, S.V. Ambudkar and M.M. Gottesman. 2007. A 'silent' polymorphism in the MDR1 genechanges substrate specificity. Science, 315: 525-528. [DOI:10.1126/science.1135308]
14. Kumar, T.R., Y. Wang, N. Lu and M.M. Matzuk. 1997. Follicle stimulating hormone is required for ovarian folliclematuration but not male fertility. Nature Genetics, 15: 201-204. [DOI:10.1038/ng0297-201]
15. McLahlan, R.I., N.G. Wreford, D.M. Robertson and D.M. de Kretser. 1995. Hormonal Control of Spermatogenesis. Trends in Endocrinology and Metabolism, 6: 95-101. [DOI:10.1016/1043-2760(94)00215-P]
16. Miller, S.A., D.D. Dykes and H.F. Polesky. 1988. A simple salting out procedure for extracting DNA from human nucleated cells. Nucleic Acids Research, 16:1215. [DOI:10.1093/nar/16.3.1215]
17. Nazifi, N., G. Rahimi-Mianji and Z. Ansari-Pirsaraei. 2011. Association of polymorphism in FSHB gene with litter size in Iran Black, Arman and Baluchi sheep. The 12th Iranian Genetics Congress. Tehran-Iran, (In Persian).
18. Ohta, T., H. Miyake, C. Miura, H. Kamei, K. Aid and T. Miura. 2007. Follicle-stimulating hormone induces spermatogenesis mediated by androgen production in Japanese eel, Anguilla japonica. Biology Reproduction, 77: 970-977. [DOI:10.1095/biolreprod.107.062299]
19. SAS. 2009. SAS Statistical Analysis Systems 2000. User's Guide. SAS Institute Incorporation, Cary, NC.
20. Souza, C.J.C., B.K. MacDougall, A. Campbell, S. McNeilly and D.T. Baird. 2001. The Booroola (FecB) phenotype is associated with a mutation in the bone morphogenetic receptor type 1 B (BMPR1B) gene. Journal of Endocrinology, 169: 1-6. [DOI:10.1677/joe.0.169r001]
21. Waldron, D.F. and D.L. Thomas. 1992. Increased litter size in Rambouillet sheep: I. Estimation of genetic parameters. Journal of Animal Science, 70: 3333-3344. [DOI:10.2527/1992.70113333x]
22. Zhang, C.Y., C.J. Wu, W.B. Zeng, K.K. Huang, X. Li, J.H. Feng, D. Wang, G.H. Hua, D.Q. Xu, Q.Y. Wen and L.G. Yang. 2011. Polymorphism in exon 3 of follicle stimulating hormone beta (FSHB) subunit gene and its association with litter traits and superovulation in the goat. Small Ruminant Research, 96: 53-59. [DOI:10.1016/j.smallrumres.2010.11.002]
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
