دوره 8، شماره 16 - ( تابستان 1396 )                   جلد 8 شماره 16 صفحات 152-157 | برگشت به فهرست نسخه ها


XML English Abstract Print


Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:

Investigation of Relationship between DRB2 Gene Polymorphism and egg number of Marshallagia Marshalli Parasites in Gastrointestinal of Ghezel Sheep Breed . rap. 2017; 8 (16) :152-157
URL: http://rap.sanru.ac.ir/article-1-816-fa.html
حسین زاده شهرام، رافت سید عباس. بررسی رابطه‌ی چندشکلی ژن DRB2 با تعداد تخم انگل مارشالاژیا مارشالی در دستگاه گوارشی گوسفند نژاد قزل . پژوهشهاي توليدات دامي. 1396; 8 (16) :152-157

URL: http://rap.sanru.ac.ir/article-1-816-fa.html


چکیده:   (823 مشاهده)
انگل­ها و کرم­های گوارشی یکی از دلایل اصلی کاهش تولید اقتصادی گوسفندان می‌باشند. پژوهش حاضر به ­منظور بررسی چندشکلی­ های
ریز ماهواره­ های اینترون 5 ژن
DRB2 و ارتباط آن با تعداد تخم انگل مارشالاژیا­ مارشالی در گوسفند نژاد قزل انجام گرفت.از 80 رأس بره نر 4 تا 6 ماهه خون‌گیری صورت گرفت و نمونه‌های مدفوع از رکتوم بره ­ها جمع‌آوری و شمارش تعداد تخم انگل به روش کلیتون لین انجام شد. استخراج DNA به روش کلروفرم-ایزوآمیل الکل انجام و ناحیه ریز ماهواره­ای اینترون 5 ژن DRB2 تکثیر گردید. محصولات حاصل از PCR روی ژل آگارز 3 درصد الکتروفورز شدند و اندازه آلل­ ها با نشانگر اندازه M25 و نرم‌افزار UVidoc مورد ارزیابی قرار گرفت. با استفاده از رویه­ی مختلط، اثر ژنوتیپ روی صفت مورد نظر توسط
نرم ­افزار
SAS بررسی گردید. آنالیز آماری ارتباط معنی­ داری را بین صفت تعداد تخم انگل مارشالاژیا­ مارشالی با چندشکلی ژن DRB2 نشان داد، به ­طوری­که بره‌های دارای ژنوتیپ­ های 288-278 و 288-288 در ناحیه اینترون 5 ژن DRB2 به­ طورمعنی ­داری (01/0>P) تعداد تخم انگل کمتری نسبت به
بره ­های دیگر داشتند. به­ عنوان نتیجه، چندشکلی ژنتیکی در این جایگاه می­ تواند به‌عنوان یک ابزار مفید در برنامه­ های انتخاب بر اساس نشانگرها مورد استفاده قرار گیرد.
متن کامل [PDF 322 kb]   (288 دریافت)    
نوع مطالعه: پژوهشي | موضوع مقاله: تخصصي
دریافت: ۱۳۹۶/۸/۸ | ویرایش نهایی: ۱۳۹۶/۸/۹ | پذیرش: ۱۳۹۶/۸/۸ | انتشار: ۱۳۹۶/۸/۸

فهرست منابع
1. Bishop, S. 2012. Possibilities to breed for resistance to nematode parasite infections in small ruminants in tropical production systems. animal, 6: 741-747. [DOI:10.1017/S1751731111000681]
2. Blattman, A. and K. Beh. 1992. Dinucleotide repeat polymorphism within the ovine major histocompatibility complex. Animal Genetics, 23: 392-392. [DOI:10.1111/j.1365-2052.1992.tb00165.x]
3. Brown, E., J. Pilkington, D. Nussey, K. Watt, A. Hayward, R. Tucker and J. Pemberton. 2013. Detecting genes for variation in parasite burden and immunological traits in a wild population: testing the candidate gene approach. Molecular Ecology, 22: 757-773. [DOI:10.1111/j.1365-294X.2012.05757.x]
4. Chaleh Chaleh, A. and E. Karimi. 2011. Gastrointestinal helminthes infection of sheep slaughtered in the city of Kermanshah. Journal of Veterinary Medicine, Islamic Azad University of Sanandaj, 4: 17-22 (In Persian).
5. Charon, K., D. Cieslak, J. Gruszczynska, J. Kuryl, M. Pierzchala and W. Swiderek. 2002. Microsatellite polymorphism of pseudo-gene OLA-DRB2 in intron 5 in two Polish sheep breeds. Animal Science Papers and Reports, 20: 67-72.
6. Domke, A., V.M. Chartier, C. Gjerde, B. Höglund, J. Leine, N. Vatn and S. Stuen. 2012. Prevalence of anthelmintic resistance in gastrointestinal nematodes of sheep and goats in Norway. Parasitology research, 111: 185-193. [DOI:10.1007/s00436-012-2817-x]
7. Etminan Rad, S. and I. Mobadi. 2005. Frequencyof species superfamily of Tricho Strongiloidea in the small animal Slaughtered in Yazd, Research and development in livestock and aquaculture, 75: 197-199 (In Persian).
8. Figueroa Castillo, J.A., R.D.M. Medina, J.M.B. Villalobos, A. Gayosso-Vázquez, R. Ulloa-Arvízu, R.A. Rodríguez and R.A. Alonso Morales. 2011. Association between major histocompatibility complex microsatellites, fecal egg count, blood packed cell volume and blood eosinophilia in Pelibuey sheep infected with Haemonchus contortus. Veterinary parasitology, 177: 339-344. [DOI:10.1016/j.vetpar.2010.11.056]
9. Geurden, T., H. Hoste, P. Jacquiet, D. Traversa, S. Sotiraki, A. Frangipanedi Regalbono and S. Privat. 2014. Anthelmintic resistance and multidrug resistance in sheep gastro-intestinal nematodes in France, Greece and Italy. Veterinary parasitology, 201: 59-66. [DOI:10.1016/j.vetpar.2014.01.016]
10. Halliday, A.M., F. LAINSON, R. Yaga, N.F. Inglis, S. Bridgett, M. Nath and D.P. Knox. 2012. Transcriptional changes in Teladorsagia circumcincta upon encountering host tissue of differing immune status. Parasitology, 139: 387-405. [DOI:10.1017/S0031182011002010]
11. hajializadeh, R., A. Rafat, D. Notter, J. shoja, G. Moghaddam and A. Nematollahi. 2015. Fecal egg counts for gastro intestinalnem atodes are associated with a polymorphism in the MHC-DRB1 1gene in the I ranian Ghezel sheep breed. Frontiers in Genetics, 10: 33-89.
12. Hu, Z.L., C.A. Park, X.L. Wu and J.M. Reecy. 2013. Animal QTLdb: an improved database tool for livestock animal QTL/association data dissemination in the post-genome era. Nucleic acids research, 41: 871-879. [DOI:10.1093/nar/gks1150]
13. Janssen, M., C. Weimann, M. Gauly and G. Erhardt. 2002. Associations between infections with Haemonchus contortus and genetic markers on ovine chromosome 20. Paper presented at the Proceedings of the 7th World Congress on Genetics Applied to Livestock Production, Montpellier, France, August, 13 pp.
14. Jewell, E., A. Robinson, D. Savage, T. Erwin, C.G. Love, G.A. Lim and D. Edwards. 2006. SSRPrimer and SSR taxonomy tree: Biome SSR discovery. Nucleic acids research, 34: 656-659. [DOI:10.1093/nar/gkl083]
15. Kaplan, R.M. and A.N. Vidyashankar. 2012. An inconvenient truth: global worming and anthelmintic resistance. Veterinary parasitology, 186: 70-78. [DOI:10.1016/j.vetpar.2011.11.048]
16. Karrow, N.A. K. Goliboski, N. Stonos, F. Schenkel and A. Peregrine. 2014. Review: Genetics of helminth resistance in sheep. Canadian Journal of Animal Science, 94: 1-9. [DOI:10.4141/cjas2013-036]
17. Lee, C., K. Munyard, K. Gregg, J. Wetherall, M. Stear and D. Groth. 2011. The influence of MHC and immunoglobulins A and E on host resistance to gastrointestinal nematodes in sheep. Journal of parasitology research, volume, 2001: 1-11. [DOI:10.1155/2011/101848]
18. Littell, R., P. Henry and C. Ammerman. 1998. Statistical analysis of repeated measures data using SAS procedures. Journal of Animal Science, 76: 1216-1231. [DOI:10.2527/1998.7641216x]
19. Martínez-Valladares, M., J.M. Martínez-Pérez, D. Robles-Pérez, C. Cordero-Perez, M. Famularo, N. Fernandez-Pato and F.A. Rojo-Vázquez. 2013. The present status of anthelmintic resistance in gastrointestinal nematode infections of sheep in the northwest of Spain by in vivo and in vitro techniques. Veterinary Parasitology, 191: 177-181. [DOI:10.1016/j.vetpar.2012.08.009]
20. McMahon, C., D. Bartley, H. Edgar, S. Ellison, J. Barley, F. Malone and I. Fairweather. 2013. Anthelmintic resistance in Northern Ireland (I): prevalence of resistance in ovine gastrointestinal nematodes, as determined through faecal egg count reduction testing. Veterinary Parasitology, 195: 122-130. [DOI:10.1016/j.vetpar.2013.01.006]
21. Mitchell, E., K. Hunt, R. Wood and B. McLea. 2010. Anthelmintic resistance on sheep farms in Wales. Veterinary Record, 166: 650-652. [DOI:10.1136/vr.b4840]
22. Moradpour, N., H. Borji, G. Razmi, M. Maleki and H. Kazemi. 2013. Pathophysiology of Marshallagia marshalli in experimentally infected lambs. Parasitology, 140: 1762-1767. [DOI:10.1017/S0031182013001042]
23. Papadopoulos, E., E. Gallidis and S. Ptochos. 2012. Anthelmintic resistance in sheep in Europe: A selected review. Veterinary Parasitology, 189: 85-88. [DOI:10.1016/j.vetpar.2012.03.036]
24. Paterson, S. 1998. Evidence for balancing selection at the major histocompatibility complex in a free-living ruminant. Journal of Heredity, 89: 289-294. [DOI:10.1093/jhered/89.4.289]
25. Periasamy, K., R. Pichler, M. Poli, S. Cristel, B. Cetrá, D. Medus and M.B. Ellahi. 2014. Candidate gene approach for parasite resistance in sheep-variation in immune pathway genes and association with fecal egg count. plos one, 9: 37-88. [DOI:10.1371/journal.pone.0088337]
26. Riggio, V., R. Pong‐Wong, G. Sallé, M. Usai, S. Casu, C. Moreno and S. Bishop. 2014. A joint analysis to identify loci underlying variation in nematode resistance in three European sheep populations. Journal of Animal Breeding and Genetics, 426-436 [DOI:10.1111/jbg.12071]
27. Roeber, F., A.R. Jex and R.B. Gasser. 2013. Impact of gastrointestinal parasitic nematodes of sheep, and the role of advanced molecular tools for exploring epidemiology and drug resistance-an Australian perspective. Parasites and Vectors, 6: 153. [DOI:10.1186/1756-3305-6-153]
28. Saddiqi, H., M. Sarwar, Z. Iqbal, M. Nisa and M. Shahzad. 2012. Markers/parameters for the evaluation of natural resistance status of small ruminants against gastrointestinal nematodes. Animal, 6: 994-1004. [DOI:10.1017/S1751731111002357]
29. Shams, S.S., S.Z. Vahed, F. Soltanzad, V. Kafil, A. Barzegari, S. Atashpaz and J. Barar. 2011. Highly effective dna extraction method from fresh, frozen, dried and clotted blood samples. bioimpacts, 1: 183 pp.
30. Singleton, D., M. Stear and L. Matthews. 2011. A mechanistic model of developing immunity to Teladorsagia circumcincta infection in lambs. Parasitology, 138: 322-332. [DOI:10.1017/S0031182010001289]
31. Talari, S.A. and M. Arbabi. 2005. Frequency ofTrichostrongilus in sheep and goats gastrointestinal tube slaughtered in Kashan, Journal of Scientifi Research, 35: 34-38 (In Persian).
32. Zane, L., L. Bargelloni and T. Patarnello. 2002. Strategies for microsatellite isolation: a review. Molecular ecology, 11: 1-16. [DOI:10.1046/j.0962-1083.2001.01418.x]

ارسال نظر درباره این مقاله : نام کاربری یا پست الکترونیک شما:
CAPTCHA

کلیه حقوق این وب سایت متعلق به پژوهشهای تولیدات دامی می باشد.

طراحی و برنامه نویسی : یکتاوب افزار شرق

© 2019 All Rights Reserved | Research On Animal Production(Scientific and Research)

Designed & Developed by : Yektaweb