دوره 10، شماره 25 - ( پاییز 1398 )
جلد 10 شماره 25 صفحات 68-61 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Mehdipour M, Daghigh Kia H. (2019). Improving Rooster Sperm Quality by Adding Different Levels of Naringenin after Freezing-Thawing Process. Res Anim Prod. 10(25), 61-68. doi:10.29252/rap.10.25.61
URL: http://rap.sanru.ac.ir/article-1-956-fa.html
URL: http://rap.sanru.ac.ir/article-1-956-fa.html
مهدی پور مهدیه، دقیق کیا حسین. بهبود کیفیت اسپرم خروس با افزودن غلظت های مختلف نارینژنین بعد از فرآیند انجماد-یخ گشایی پژوهشهاي توليدات دامي 1398; 10 (25) :68-61 10.29252/rap.10.25.61
گروه علوم دامی، دانشگاه تبریز
چکیده: (3279 مشاهده)
تلقیح مصنوعی یک تکنولوژی تولیدمثلی است که در آن از بهترین نرهای پرورشی استفاده مؤثر می‌شود. تلقیح مصنوعی موفق، متأثر از عوامل متعددی می‌باشد که یکی از اصلی‌ترین و کلیدی‌ترین آن‌ها دسترسی به اسپرم‌های بارور بعد از فرآیند انجماد- ذوب می‌باشد. هدف از این پژوهش بررسی اثر غلظتهای مختلف نارینژنین پس از فرایند انجماد و یخ‌گشایی می‌باشد. اسپرم گیری به‌صورت هفته‌ای دو بار و به روش مالش شکمی انجام شد. پس از افزودن رقیق‌کننده به نمونه‌های منی، نمونه‌ها برای تعادل دمایی در داخل یخچال با دمای چهار درجه سانتیگراد قرار داده شدند. سپس در تانک حاوی ازت مایع ذخیره شدند. غلظتهای مختلف نارینژنین شامل 0، 50، 100 و 150 میکرومولار بودند. پس از یخ‌گشایی، پارامترهای جنبایی، زنده‌مانی، میزان ناهنجاری‌ها، یکپارچگی غشاء، میزان تولید MDA، فعالیت آندژنوسی آنزیم‌های SOD و گلوتاتیون پراکسیداز و ظرفیت کل آنتی‌اکسیدانی، ارزیابی شد. نتایج نشان داد که جنبایی کل و پیش‌رونده در تیمار 100 میکرومولار نارینژنین به‌طور معنی‌داری در مقایسه با تیمار کنترل افزایش‌یافت. زنده‌مانی و یکپارچگی غشای سلول‌های اسپرم در غلظت 100 میکرومولار در مقایسه با گروه شاهد به‌طور معنی‌داری افزایش پیدا کرد (05/0p<). تیمار 100 میکرومولار نارینژنین باعث افزایش گلوتاتیون پراکسیداز و ظرفیت کل آنتی‌اکسیدانی و کاهش میزان MDA در مقایسه با تیمار کنترل شد (05/0p<). بر اساس نتایج تحقیق حاضر، نارینژنین در غلظت 100 میکرومولار در محیط رقیق‌کننده، کیفیت اسپرم خروس را پس از یخ گشایی بهبود می‌بخشد.
نوع مطالعه: پژوهشي |
موضوع مقاله:
فیزیولوژی
دریافت: 1397/6/20 | ویرایش نهایی: 1398/9/24 | پذیرش: 1398/2/29 | انتشار: 1398/9/4
دریافت: 1397/6/20 | ویرایش نهایی: 1398/9/24 | پذیرش: 1398/2/29 | انتشار: 1398/9/4
فهرست منابع
1. Aitken, R.J., J.S. Clarkson and S. Fishel. 1989. Generation of reactive oxygen species, lipid peroxidation, and human sperm function. Biology of Reproduction, 41: 183-97. [DOI:10.1095/biolreprod41.1.183]
2. Aitken, R.J., D. Buckingham and D. Harkiss. 1993. Use of a xanthine oxidase free radical generating system to investigate the cytotoxic effects of reactive oxygen species on human spermatozoa. Reproduction, Fertility and Development, 97: 441-50. [DOI:10.1530/jrf.0.0970441]
3. Alvarez, J.G. and B.T. Storey. 1984. Assessment of cell damage caused by spon-taneous lipid peroxidation in rabbit spermatozoa . Biology of Reproduction, 30: 323-331. [DOI:10.1095/biolreprod30.2.323]
4. Blanco, J.M., G. Gee, D.E. Wildt and A.M. Donoghue. 2000. Species variation in osmotic, cryoprotectant, and cooling rate tolerance in poultry, eagle, and peregrine falcon spermatozoa. Biology of Reproduction, 63: 1164-1171. [DOI:10.1095/biolreprod63.4.1164]
5. Blesbois, E., I. Grasseau and F. Seigneurin. 2005. Membrane fluidity and the ability of domestic bird spermatozoa to survive cryopreservation. Reproduction, 129: 371-378. [DOI:10.1530/rep.1.00454]
6. Breque, C., P. Surai and J.P. Brillard. 2003. Roles of antioxidants on prolonged storage of avian spermatozoa in vivo and in vitro. Molecular Reproduction and Development, 66: 314-23. [DOI:10.1002/mrd.10347]
7. Bucak, M.N., S. Sarıözkan, P.B. Tuncer, P.A. Ulutaş and H.İ. Akçadağ. 2009. Effect of antioxidants on microscopic semen parameters, lipid peroxidation and antioxidant activities in Angora goat semen following cryopreservation. Small Ruminant Research, 81: 90-95. [DOI:10.1016/j.smallrumres.2008.11.011]
8. De Lamirande, E. and C. Gagnon. 1992. Reactive oxygen species and human spermatozoa. I. Effects on the motility of intact spermatozoa and on sperm axonemes. Journal of Andrology, 13: 368-378
9. Donoghue, A. and G. Wishart. 2000. Storage of poultry semen. Animal Reproduction Science, 62: 213-232. [DOI:10.1016/S0378-4320(00)00160-3]
10. Douard, V., D. Hermier, M. Magistrini, C. Labbé and E. Blesbois. 2004. Impact of changes in composition of storage medium on lipid content and quality of turkey spermatozoa. Theriogenology, 61: 1-13. [DOI:10.1016/S0093-691X(03)00180-8]
11. Fattah, A., M. Sharafi, R. Masoudi, A. Shahverdi, V. Esmaeili and A. Najafi. 2017. l-Carnitine in rooster semen cryopreservation: Flow cytometric, biochemical and motion findings for frozen-thawed sperm. Cryobiology, 74: 148-153. [DOI:10.1016/j.cryobiol.2016.10.009]
12. Fallahi, F., M. Roghani and S. Moghadami. 2012. Citrus flavonoid naringenin improves aortic reactivity in streptozotocin-diabetic rats. Indian Journal of Pharmacology, 44(3): 382-387. [DOI:10.4103/0253-7613.96350]
13. Feyzi, S., M. Sharafi and S. Rahimi. 2018. Stress preconditioning of rooster semen before cryopreservation improves fertility potential of thawed sperm. Poultry Science, 97: 2582-2590. [DOI:10.3382/ps/pey067]
14. Hammerstedt, R.H. and J.K. Graham. 1992. Cryopreservation of poultry sperm: the enigma of glycerol. Cryobiology, 29: 26-38. [DOI:10.1016/0011-2240(92)90004-L]
15. Leeson, S. and J.D. Summers. 2010. Broiler breeder production, Nottingham University Press, pp. 21-47.
16. Long, J. 2006. Avian semen cryopreservation: what are the biological challenges? Poultry Science, 85: 232-236. [DOI:10.1093/ps/85.2.232]
17. Mehdipour, M., H.D. Kia, M. Nazari and A. Najafi. 2017. Effect of lecithin nanoliposome or soybean lecithin supplemented by pomegranate extract on post-thaw flow cytometric, microscopic and oxidative parameters in ram semen. Cryobiology, 78: 34-40. [DOI:10.1016/j.cryobiol.2017.07.005]
18. Mehdipour, M., H. Daghigh Kia, G. Moghaddam and H. Hamishehkar. 2018. Effect of egg yolk plasma and soybean lecithin on rooster frozen-thawed sperm quality and fertility. Theriogenology, 116: 89-94. [DOI:10.1016/j.theriogenology.2018.05.013]
19. Mehdipour, M., H.D. Kia, A. Najafi, H.V. Dodaran and O. Garcia-Alvarez. 2016. Effect of green tea (Camellia sinensis) extract and pre-freezing equilibration time on the post-thawing quality of ram semen cryopreserved in a soybean lecithin-based extender. Cryobiology, 73: 297-303. [DOI:10.1016/j.cryobiol.2016.10.008]
20. Najafi, A., R.A. Taheri, M. Mehdipour, G. Farnoosh and F. Martinez-Pastor. 2018. Lycopene-loaded nanoliposomes improve the performance of a modified Beltsville extender broiler breeder roosters. Animal Reproduction Science, 195: 168-175. [DOI:10.1016/j.anireprosci.2018.05.021]
21. Najafi, A., H. Daghigh-Kia, H.V. Dodaran, M. Mehdipour and M. Alvarez-Rodriguez. 2017. Ethylene glycol, but not DMSO, could replace glycerol inclusion in soybean lecithin-based extenders in ram sperm cryopreservation. Animal Reproduction Science, 177: 35-41. [DOI:10.1016/j.anireprosci.2016.12.004]
22. Najafi, A., R.A. Taheri, M. Mehdipour, F. Martínez-Pastor, A.A. Rouhollahi and M.R. Nourani. 2018. Improvement of post-thawed sperm quality in broiler breeder roosters by ellagic acid-loaded liposomes. Poultry Science, 195: 168-175. [DOI:10.1016/j.anireprosci.2018.05.021]
23. Pérez‐Pastén, R., E. Martínez Galero and G. Chamorro‐Cevallos. 2010. Quercetin and naringenin reduce abnormal development of mouse embryos produced by hydroxyurea. Journal of Pharmacy and Pharmacology, 62: 1003-1009. [DOI:10.1111/j.2042-7158.2010.01118.x]
24. Roy, S., N. Rahaman, F. Ahmed, S. Metya and S. Sannigrahi. 2013. Naringenin attenuates testicular damage, germ cell death and oxidative stress in streptozotocin induced diabetic rats: naringenin prevents diabetic rat testicular damage. Journal of Applied Biomedicine, 11: 195-208. [DOI:10.2478/v10136-012-0026-7]
25. Salamon, S. and W. Maxwell. 2000. Storage of ram semen. Animal Reproduction Science, 62: 77-112. [DOI:10.1016/S0378-4320(00)00155-X]
26. Sharafi, M., M. Zhandi and A. Akbari Sharif. 2015. Supplementation of soybean lecithin-based semen extender by antioxidants: complementary flowcytometric study on post-thawed ram spermatozoa. Cell Tissue Bank, 16: 261-9. [DOI:10.1007/s10561-014-9458-5]
27. Solak, K.A., R.R. Santos, M. van den Berg, B.J. Blaauboer, B.A. Roelen and M.B. van Duursen. 2014. Naringenin (NAR) and 8-prenylnaringenin (8-PN) reduce the developmental competence of porcine oocytes in vitro. Reproductive Toxicology, 49: 1-11. [DOI:10.1016/j.reprotox.2014.05.013]
28. Tselutin, K., F. Seigneurin and E. Blesbois. 1999. Comparison of cryoprotectants and methods of cryopreservation of fowl spermatozoa. Poultry Science, 78: 586-590. [DOI:10.1093/ps/78.4.586]
29. Zribi, N., N.F. Chakroun, F. Ben Abdallah, H. Elleuch, A. Sellami, J. Gargouri, T. Rebai, F. Fakhfakh and L.A. Keskes. 2012. Effect of freezing-thawing process and quercetin on human sperm survival and DNA integrity. Cryobiology, 65: 326-31. [DOI:10.1016/j.cryobiol.2012.09.003]
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
