دوره 10، شماره 25 - ( پاییز 1398 )                   جلد 10 شماره 25 صفحات 61-68 | برگشت به فهرست نسخه ها


XML English Abstract Print


Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:

Mehdipour M, Daghigh Kia H. Improving Rooster Sperm Quality by Adding Different Levels of Naringenin after Freezing-Thawing Process. rap. 2019; 10 (25) :61-68
URL: http://rap.sanru.ac.ir/article-1-956-fa.html
مهدی پور مهدیه، دقیق کیا حسین. بهبود کیفیت اسپرم خروس با افزودن غلظت های مختلف نارینژنین بعد از فرآیند انجماد-یخ گشایی. پژوهشهاي توليدات دامي. 1398; 10 (25) :61-68

URL: http://rap.sanru.ac.ir/article-1-956-fa.html


گروه علوم دامی، دانشگاه تبریز
چکیده:   (710 مشاهده)
 تلقیح مصنوعی یک تکنولوژی تولیدمثلی است که در آن از بهترین نرهای پرورشی استفاده مؤثر می‌شود. تلقیح مصنوعی موفق، متأثر از عوامل متعددی می‌باشد که یکی از اصلی‌ترین و کلیدی‌ترین آن‌ها دسترسی به اسپرم‌های بارور بعد از فرآیند انجماد- ذوب می‌باشد. هدف از این پژوهش بررسی اثر غلظت‌های مختلف نارینژنین پس از فرایند انجماد و یخ‌گشایی می‌باشد. اسپرم­ گیری به‌صورت هفته‌ای دو بار و به روش مالش شکمی انجام شد. پس از افزودن رقیق‌کننده به نمونه‌های منی، نمونه‌ها برای تعادل دمایی در داخل یخچال با دمای چهار  درجه سانتی­گراد قرار داده شدند. سپس در تانک حاوی ازت مایع ذخیره شدند. غلظت­های مختلف نارینژنین شامل 0، 50، 100 و 150 میکرومولار بودند. پس از یخ‌گشایی، پارامترهای جنبایی، زنده‌مانی، میزان ناهنجاری‌ها، یکپارچگی غشاء، میزان تولید MDA، فعالیت آندژنوسی آنزیم‌های SOD و گلوتاتیون پراکسیداز و ظرفیت کل آنتی‌اکسیدانی، ارزیابی شد. نتایج نشان داد که جنبایی کل و پیش‌رونده در تیمار 100 میکرومولار نارینژنین به‌طور معنی‌داری در مقایسه با تیمار کنترل افزایش‌یافت. زنده‌مانی و یکپارچگی غشای سلول‌های اسپرم در غلظت 100 میکرومولار در مقایسه با گروه شاهد به‌طور معنی‌داری افزایش پیدا کرد (05/0p<). تیمار 100 میکرومولار نارینژنین باعث افزایش گلوتاتیون پراکسیداز و ظرفیت کل آنتی‌اکسیدانی و کاهش میزان MDA در مقایسه با تیمار کنترل شد (05/0p<). بر اساس نتایج تحقیق حاضر، نارینژنین در غلظت 100 میکرومولار در محیط رقیق‌کننده، کیفیت اسپرم خروس را پس از یخ­ گشایی بهبود می‌بخشد.
متن کامل [PDF 438 kb]   (167 دریافت)    
نوع مطالعه: پژوهشي | موضوع مقاله: فیزیولوژی
دریافت: 1397/6/20 | ویرایش نهایی: 1398/9/24 | پذیرش: 1398/2/29 | انتشار: 1398/9/4

فهرست منابع
1. Aitken, R.J., J.S. Clarkson and S. Fishel. 1989. Generation of reactive oxygen species, lipid peroxidation, and human sperm function. Biology of Reproduction, 41: 183-97. [DOI:10.1095/biolreprod41.1.183]
2. Aitken, R.J., D. Buckingham and D. Harkiss. 1993. Use of a xanthine oxidase free radical generating system to investigate the cytotoxic effects of reactive oxygen species on human spermatozoa. Reproduction, Fertility and Development, 97: 441-50. [DOI:10.1530/jrf.0.0970441]
3. Alvarez, J.G. and B.T. Storey. 1984. Assessment of cell damage caused by spon-taneous lipid peroxidation in rabbit spermatozoa . Biology of Reproduction, 30: 323-331. [DOI:10.1095/biolreprod30.2.323]
4. Blanco, J.M., G. Gee, D.E. Wildt and A.M. Donoghue. 2000. Species variation in osmotic, cryoprotectant, and cooling rate tolerance in poultry, eagle, and peregrine falcon spermatozoa. Biology of Reproduction, 63: 1164-1171. [DOI:10.1095/biolreprod63.4.1164]
5. Blesbois, E., I. Grasseau and F. Seigneurin. 2005. Membrane fluidity and the ability of domestic bird spermatozoa to survive cryopreservation. Reproduction, 129: 371-378. [DOI:10.1530/rep.1.00454]
6. Breque, C., P. Surai and J.P. Brillard. 2003. Roles of antioxidants on prolonged storage of avian spermatozoa in vivo and in vitro. Molecular Reproduction and Development, 66: 314-23. [DOI:10.1002/mrd.10347]
7. Bucak, M.N., S. Sarıözkan, P.B. Tuncer, P.A. Ulutaş and H.İ. Akçadağ. 2009. Effect of antioxidants on microscopic semen parameters, lipid peroxidation and antioxidant activities in Angora goat semen following cryopreservation. Small Ruminant Research, 81: 90-95. [DOI:10.1016/j.smallrumres.2008.11.011]
8. De Lamirande, E. and C. Gagnon. 1992. Reactive oxygen species and human spermatozoa. I. Effects on the motility of intact spermatozoa and on sperm axonemes. Journal of Andrology, 13: 368-378
9. Donoghue, A. and G. Wishart. 2000. Storage of poultry semen. Animal Reproduction Science, 62: 213-232. [DOI:10.1016/S0378-4320(00)00160-3]
10. Douard, V., D. Hermier, M. Magistrini, C. Labbé and E. Blesbois. 2004. Impact of changes in composition of storage medium on lipid content and quality of turkey spermatozoa. Theriogenology, 61: 1-13. [DOI:10.1016/S0093-691X(03)00180-8]
11. Fattah, A., M. Sharafi, R. Masoudi, A. Shahverdi, V. Esmaeili and A. Najafi. 2017. l-Carnitine in rooster semen cryopreservation: Flow cytometric, biochemical and motion findings for frozen-thawed sperm. Cryobiology, 74: 148-153. [DOI:10.1016/j.cryobiol.2016.10.009]
12. Fallahi, F., M. Roghani and S. Moghadami. 2012. Citrus flavonoid naringenin improves aortic reactivity in streptozotocin-diabetic rats. Indian Journal of Pharmacology, 44(3): 382-387. [DOI:10.4103/0253-7613.96350]
13. Feyzi, S., M. Sharafi and S. Rahimi. 2018. Stress preconditioning of rooster semen before cryopreservation improves fertility potential of thawed sperm. Poultry Science, 97: 2582-2590. [DOI:10.3382/ps/pey067]
14. Hammerstedt, R.H. and J.K. Graham. 1992. Cryopreservation of poultry sperm: the enigma of glycerol. Cryobiology, 29: 26-38. [DOI:10.1016/0011-2240(92)90004-L]
15. Leeson, S. and J.D. Summers. 2010. Broiler breeder production, Nottingham University Press, pp. 21-47.
16. Long, J. 2006. Avian semen cryopreservation: what are the biological challenges? Poultry Science, 85: 232-236. [DOI:10.1093/ps/85.2.232]
17. Mehdipour, M., H.D. Kia, M. Nazari and A. Najafi. 2017. Effect of lecithin nanoliposome or soybean lecithin supplemented by pomegranate extract on post-thaw flow cytometric, microscopic and oxidative parameters in ram semen. Cryobiology, 78: 34-40. [DOI:10.1016/j.cryobiol.2017.07.005]
18. Mehdipour, M., H. Daghigh Kia, G. Moghaddam and H. Hamishehkar. 2018. Effect of egg yolk plasma and soybean lecithin on rooster frozen-thawed sperm quality and fertility. Theriogenology, 116: 89-94. [DOI:10.1016/j.theriogenology.2018.05.013]
19. Mehdipour, M., H.D. Kia, A. Najafi, H.V. Dodaran and O. Garcia-Alvarez. 2016. Effect of green tea (Camellia sinensis) extract and pre-freezing equilibration time on the post-thawing quality of ram semen cryopreserved in a soybean lecithin-based extender. Cryobiology, 73: 297-303. [DOI:10.1016/j.cryobiol.2016.10.008]
20. Najafi, A., R.A. Taheri, M. Mehdipour, G. Farnoosh and F. Martinez-Pastor. 2018. Lycopene-loaded nanoliposomes improve the performance of a modified Beltsville extender broiler breeder roosters. Animal Reproduction Science, 195: 168-175. [DOI:10.1016/j.anireprosci.2018.05.021]
21. Najafi, A., H. Daghigh-Kia, H.V. Dodaran, M. Mehdipour and M. Alvarez-Rodriguez. 2017. Ethylene glycol, but not DMSO, could replace glycerol inclusion in soybean lecithin-based extenders in ram sperm cryopreservation. Animal Reproduction Science, 177: 35-41. [DOI:10.1016/j.anireprosci.2016.12.004]
22. Najafi, A., R.A. Taheri, M. Mehdipour, F. Martínez-Pastor, A.A. Rouhollahi and M.R. Nourani. 2018. Improvement of post-thawed sperm quality in broiler breeder roosters by ellagic acid-loaded liposomes. Poultry Science, 195: 168-175. [DOI:10.1016/j.anireprosci.2018.05.021]
23. Pérez‐Pastén, R., E. Martínez Galero and G. Chamorro‐Cevallos. 2010. Quercetin and naringenin reduce abnormal development of mouse embryos produced by hydroxyurea. Journal of Pharmacy and Pharmacology, 62: 1003-1009. [DOI:10.1111/j.2042-7158.2010.01118.x]
24. Roy, S., N. Rahaman, F. Ahmed, S. Metya and S. Sannigrahi. 2013. Naringenin attenuates testicular damage, germ cell death and oxidative stress in streptozotocin induced diabetic rats: naringenin prevents diabetic rat testicular damage. Journal of Applied Biomedicine, 11: 195-208. [DOI:10.2478/v10136-012-0026-7]
25. Salamon, S. and W. Maxwell. 2000. Storage of ram semen. Animal Reproduction Science, 62: 77-112. [DOI:10.1016/S0378-4320(00)00155-X]
26. Sharafi, M., M. Zhandi and A. Akbari Sharif. 2015. Supplementation of soybean lecithin-based semen extender by antioxidants: complementary flowcytometric study on post-thawed ram spermatozoa. Cell Tissue Bank, 16: 261-9. [DOI:10.1007/s10561-014-9458-5]
27. Solak, K.A., R.R. Santos, M. van den Berg, B.J. Blaauboer, B.A. Roelen and M.B. van Duursen. 2014. Naringenin (NAR) and 8-prenylnaringenin (8-PN) reduce the developmental competence of porcine oocytes in vitro. Reproductive Toxicology, 49: 1-11. [DOI:10.1016/j.reprotox.2014.05.013]
28. Tselutin, K., F. Seigneurin and E. Blesbois. 1999. Comparison of cryoprotectants and methods of cryopreservation of fowl spermatozoa. Poultry Science, 78: 586-590. [DOI:10.1093/ps/78.4.586]
29. Zribi, N., N.F. Chakroun, F. Ben Abdallah, H. Elleuch, A. Sellami, J. Gargouri, T. Rebai, F. Fakhfakh and L.A. Keskes. 2012. Effect of freezing-thawing process and quercetin on human sperm survival and DNA integrity. Cryobiology, 65: 326-31. [DOI:10.1016/j.cryobiol.2012.09.003]

ارسال نظر درباره این مقاله : نام کاربری یا پست الکترونیک شما:
CAPTCHA

ارسال پیام به نویسنده مسئول


کلیه حقوق این وب سایت متعلق به پژوهشهای تولیدات دامی می باشد.

طراحی و برنامه نویسی : یکتاوب افزار شرق

© 2020 All Rights Reserved | Research On Animal Production(Scientific and Research)

Designed & Developed by : Yektaweb