دوره 16، شماره 1 - ( بهار 1404 )
جلد 16 شماره 1 صفحات 166-155 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Lotfi vafa V, Mirzadeh K, Tabatabaei Vakili S, Kazemizadeh A. (2025). Effect of Zinc Nano Oxide on the Quality of Turkey Sperm in Liquid State. Res Anim Prod. 16(1), 155-166. doi:10.61186/rap.16.1.155
URL: http://rap.sanru.ac.ir/article-1-1469-fa.html
URL: http://rap.sanru.ac.ir/article-1-1469-fa.html
لطفی وفا وحید، میرزاده خلیل، طباطبائی وکیلی صالح، کاظمی زاده امین. تأثیر نانو اکسیدروی بر فراسنجههای کیفی اسپرم بوقلمون در شرایط مایع پژوهشهاي توليدات دامي 1404; 16 (1) :166-155 10.61186/rap.16.1.155
1- گروه علوم دامی، دانشکده علوم دامی و صنایع غذایی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی خوزستان، اهواز، ایران
چکیده: (386 مشاهده)
چکیده مبسوط
مقدمه و هدف: در دو دهه گذشته شاهد حجم فزاینده‌ای از تحقیقات در مورد اثرات نانوذرات بر پارامترهای مایع منی بوده‌ایم. نانوذرات مولکول‌هایی با اندازه 1 تا 100 نانومتر هستند. نانوذرات به‌دلیل خواص منحصربه فرد خود، نظرات قابل توجهی را در بیوتکنولوژی، پزشکی، تولیدمثل حیوانات و علوم دامپزشکی به‌خود جلب کرده‌اند . نانوذرات نسبت سطح به حجم بالایی دارند که باعث افزایش واکنش‌پذیری و توانایی نفوذ بیشتر در بافت‌های بیولوژیک می‌شود. این ذرات از پایداری شیمیایی بالایی برخوردار هستند که می‌توانند در برابر شرایط محیطی مختلف پایداری خود را حفظ کنند و همچنین به‌دلیل داشتن اندازه نانوی خود می‌توانند از غشای سلول‌های بیولوژیکی عبور کرده و اثرگذاری بهتر در سلول شوند. یکی از عناصر مهم و ناثیرگذار در سلامت اسپرم عنصر روی است. عنصر روی نقش مهمی در زنده ماندن و تحرک اسپرم دارد و بر متابولیسم پروتئین، سنتز اسید نوکلئیک و تثبیت غشای اسپرم تأثیر می‌گذارد. اکثر آنزیم‌ها، ازجمله کربنیک انیدراز، کربوکسی پپتیداز و سوپراکسید دیسموتاز، به روی به‌عنوان کوفاکتور نیاز دارند. اثر مثبت روی بر کیفیت منی را می‌توان با توانایی آن در افزایش ظرفیت آنتی‌اکسیدانی اسپرم برای غلبه‌بر استرس اکسیداتیو ناشی از تولید بیش از حد گونه‌های فعال اکسیژن (ROS) توضیح داد. گونه‌های فعال اکسیژن مولکول‌های واکنشی با عمر کوتاه (10-9 ثانیه) متعلق به دسته رادیکال‌های آزاد هستند که از اکسیژن مشتق شده‌اند و با وجود یک یا چند الکترون جفت نشده در آخرین لایه الکترونی خود مشخص می‌شوند. به دلیل ساختار شیمیایی ناپایدارشان، برای رسیدن به حالت متعادل به مولکول‌های آلی مجاور مانند لیپیدها، پروتئین‌ها و DNA حمله می‌کنند. در واقع، تولید کنترل‌شده‌ی ROSها در اسپرم نقش فیزیولوژیکی مهم در رویدادهای اساسی در اسپرم مانند فعال‌سازی تحرک، چسبندگی گذرای اسپرم به لوله رحم، ظرفیت‌دار شدن، افزایش در فعالیت اسپرم، واکنش آکروزومی و ادغام اسپرم-اووسیت را هدایت می‌کنند. از سوی دیگر اما، هنگامی که سطح ROS مایع‌منی از دفاع آنتی‌اکسیدانی فراتر رود، وضعیتی از استرس اکسیداتیو ایجاد می‌شود. استرس اکسیداتیو در منی منجربه پراکسیداسیون لیپیدی غشای سیتوپلاسمی اسپرم، آسیب غشای آکروزومی، اکسیداسیون و تجزیه DNA و در نهایت ناهنجاری‌های کروموزومی در اسپرم می‌شود. عنصر روی از تولید گونه‌های فعال اکسیژن، اسپرم‌ها و لکوسیت‌های معیوب جلوگیری می‌کند. همچنین با مهار پراکسیداسیون لیپیدی و کاهش سطح آنتی‌بادی‌های ضد اسپرم، دارای اثرات آنتی‌اکسیدانی است. استرس اکسیداتیو در اسپرم پدیده‌ای است که با افزایش سرعت اکسیداسیون اجزای سلولی و تولید بیش از حد گونه‌های فعال اکسیژن مرتبط است. اسپرماتوژنز طی سه مرحله متوالی (اسپرماتوسیتوژنز، اسپرمیوژنز و اسپرماسیون) در مجاری اسپرم‌ساز بیضه رخ می‌دهد. مدت زمان اسپرماتوژنز در پرندگان بسیار کوتاه‌تر از پستانداران است که تقریباً 25 روز است. محتوای بالای اسیدهای چرب غیراشباع در غشای سلولی اسپرم پرندگان، این سلول‌ها را به‌ویژه در برابر پراکسیداسیون لیپیدی حساس می‌کند. بنابراین، برای اطمینان از عملکرد صحیح سلول‌ها، لازم است بین تشکیل ROSها و عملکرد محافظتی سیستم آنتی‌اکسیدانی تعادل وجود داشته باشد. محتوای بالای اسیدهای چرب غیراشباع در فسفولیپیدهای غشای سلولی اسپرم پرندگان عمدتاً اسیدهای آراشیدونیک (20 کربنه) و دوکوزاتترانوئیک اسید (22 کربنه) هستند. که این عامل سلول‌ها را به‌ویژه در برابر پراکسیداسیون لیپیدی حساس می‌کند، آسیب پراکسیداتیو مورفولوژی اسپرم را تحت تأثیر قرار می‌دهد و تحرک اسپرم را کاهش می‌دهد. بنابراین اعتقاد‌بر این است که علت اصلی از دست دادن ظرفیت باروری مشاهده شده در طول ذخیره‌سازی مایع‌منی پرندگان است. گزارش شده‌است که برخی از متالو آنزیم‌ها (مانند لاکتات دهیدروژناز و سوربیتول دهیدروژناز) که نقش مهمی در افزایش تحرک اسپرم دارند، ممکن است حاوی روی در ساختار خود باشند. نانو اکسیروی سبب افزایش یکپارچگی غشا اسپرم آکروزوم شده و سبب حفظ سلامت غشا و بهبود عملکرد در آکروزوم می‌شود همچنین این نانو اکسید بر عملکرد میتوکندری سلول اثر گذار بوده و سبب یکپارچگی عملکرد آن می‌شود.
مواد و روش‌ها: نمونه‌گیری از 18 قطعه بوقلمون نژاد Bronze turkey دو بار در هفته و به‌مدت 5 هفته انجام‌گرفت. نمونه‌ها پس از مخلوط شدن با یکدیگر به‌منظور از بین رفتن اثرات فردی به 4 گروه تقسیم شده و مقادیر مختلف نانو اکسیدروی (صفر، 50، 100 و 200 میکروگرم در میلی‌لیتر) به رقیق‌کننده افزوده شد و تحت دمایی 4 درجه سانتی‌گراد فراسنجههای کیفی اسپرم (درصد جنبایی کل، درصد جنبایی پیش‌رونده، درصد زنده‌مانی، درصد سلامت غشا و درصد ناهنجاری) در زمان‌های مختلف ذخیره‌سازی (صفر، 12، 24 و 48 ساعت) بررسی شدند.
یافته‌ها: این نتایج با استفاده از سطوح 50، 100 و 200 میکروگرم در میلی‌لیتر نانو اکسیدروی حاصل شد. در ارتباط با درصد تحرک کل، پیش‌رونده، زنده‌مانی، سلامت غشا و ناهنجاری، بعد از 24 و 48 ساعت نانو اکسیدروی اثر معنی‌داری بر فراسنجههای ذکرشده داشت. تیمار 100 میکروگرم در میلی‌لیتر بهترین عملکرد را در طی افزایش در زمان ذخیره‌سازی از خود بر روی فراسنجههای کیفی اسپرم بوقلمون نشان داد و تیمار شاهد دارای پایین‌ترین عملکرد از این نظر بود. نتایج نشان دادند که افزودن سطوح مختلف نانو اکسیدروی در رقیق‌کننده اسپرم بوقلمون بعد از 24 و 48 ساعت باعث تفاوت معنی‌داری نسبت به تیمار شاهد شد و سبب بهبود در فراسنجههای کیفی اسپرم بوقلمون در مقایسه با تیمار شاهد شد.
نتیجه‌گیری: افزودن نانو اکسیدروی، فراسنجههای کیفی اسپرم بوقلمون را در حالت مایع (دمای 4 درجه سانتی‌گراد) بهبود بخشید و اضافه کردن مقدار 100 میکروگرم بر میلی‌لیتر نانو اکسیدروی در رقیق‌کننده اسپرم بهترین عملکرد را بین سطوح مختلف (صفر، 50، 100 و 200 میکروگرم بر میلی‌لیتر) اضافه‌شده داشت.
مقدمه و هدف: در دو دهه گذشته شاهد حجم فزاینده‌ای از تحقیقات در مورد اثرات نانوذرات بر پارامترهای مایع منی بوده‌ایم. نانوذرات مولکول‌هایی با اندازه 1 تا 100 نانومتر هستند. نانوذرات به‌دلیل خواص منحصربه فرد خود، نظرات قابل توجهی را در بیوتکنولوژی، پزشکی، تولیدمثل حیوانات و علوم دامپزشکی به‌خود جلب کرده‌اند . نانوذرات نسبت سطح به حجم بالایی دارند که باعث افزایش واکنش‌پذیری و توانایی نفوذ بیشتر در بافت‌های بیولوژیک می‌شود. این ذرات از پایداری شیمیایی بالایی برخوردار هستند که می‌توانند در برابر شرایط محیطی مختلف پایداری خود را حفظ کنند و همچنین به‌دلیل داشتن اندازه نانوی خود می‌توانند از غشای سلول‌های بیولوژیکی عبور کرده و اثرگذاری بهتر در سلول شوند. یکی از عناصر مهم و ناثیرگذار در سلامت اسپرم عنصر روی است. عنصر روی نقش مهمی در زنده ماندن و تحرک اسپرم دارد و بر متابولیسم پروتئین، سنتز اسید نوکلئیک و تثبیت غشای اسپرم تأثیر می‌گذارد. اکثر آنزیم‌ها، ازجمله کربنیک انیدراز، کربوکسی پپتیداز و سوپراکسید دیسموتاز، به روی به‌عنوان کوفاکتور نیاز دارند. اثر مثبت روی بر کیفیت منی را می‌توان با توانایی آن در افزایش ظرفیت آنتی‌اکسیدانی اسپرم برای غلبه‌بر استرس اکسیداتیو ناشی از تولید بیش از حد گونه‌های فعال اکسیژن (ROS) توضیح داد. گونه‌های فعال اکسیژن مولکول‌های واکنشی با عمر کوتاه (10-9 ثانیه) متعلق به دسته رادیکال‌های آزاد هستند که از اکسیژن مشتق شده‌اند و با وجود یک یا چند الکترون جفت نشده در آخرین لایه الکترونی خود مشخص می‌شوند. به دلیل ساختار شیمیایی ناپایدارشان، برای رسیدن به حالت متعادل به مولکول‌های آلی مجاور مانند لیپیدها، پروتئین‌ها و DNA حمله می‌کنند. در واقع، تولید کنترل‌شده‌ی ROSها در اسپرم نقش فیزیولوژیکی مهم در رویدادهای اساسی در اسپرم مانند فعال‌سازی تحرک، چسبندگی گذرای اسپرم به لوله رحم، ظرفیت‌دار شدن، افزایش در فعالیت اسپرم، واکنش آکروزومی و ادغام اسپرم-اووسیت را هدایت می‌کنند. از سوی دیگر اما، هنگامی که سطح ROS مایع‌منی از دفاع آنتی‌اکسیدانی فراتر رود، وضعیتی از استرس اکسیداتیو ایجاد می‌شود. استرس اکسیداتیو در منی منجربه پراکسیداسیون لیپیدی غشای سیتوپلاسمی اسپرم، آسیب غشای آکروزومی، اکسیداسیون و تجزیه DNA و در نهایت ناهنجاری‌های کروموزومی در اسپرم می‌شود. عنصر روی از تولید گونه‌های فعال اکسیژن، اسپرم‌ها و لکوسیت‌های معیوب جلوگیری می‌کند. همچنین با مهار پراکسیداسیون لیپیدی و کاهش سطح آنتی‌بادی‌های ضد اسپرم، دارای اثرات آنتی‌اکسیدانی است. استرس اکسیداتیو در اسپرم پدیده‌ای است که با افزایش سرعت اکسیداسیون اجزای سلولی و تولید بیش از حد گونه‌های فعال اکسیژن مرتبط است. اسپرماتوژنز طی سه مرحله متوالی (اسپرماتوسیتوژنز، اسپرمیوژنز و اسپرماسیون) در مجاری اسپرم‌ساز بیضه رخ می‌دهد. مدت زمان اسپرماتوژنز در پرندگان بسیار کوتاه‌تر از پستانداران است که تقریباً 25 روز است. محتوای بالای اسیدهای چرب غیراشباع در غشای سلولی اسپرم پرندگان، این سلول‌ها را به‌ویژه در برابر پراکسیداسیون لیپیدی حساس می‌کند. بنابراین، برای اطمینان از عملکرد صحیح سلول‌ها، لازم است بین تشکیل ROSها و عملکرد محافظتی سیستم آنتی‌اکسیدانی تعادل وجود داشته باشد. محتوای بالای اسیدهای چرب غیراشباع در فسفولیپیدهای غشای سلولی اسپرم پرندگان عمدتاً اسیدهای آراشیدونیک (20 کربنه) و دوکوزاتترانوئیک اسید (22 کربنه) هستند. که این عامل سلول‌ها را به‌ویژه در برابر پراکسیداسیون لیپیدی حساس می‌کند، آسیب پراکسیداتیو مورفولوژی اسپرم را تحت تأثیر قرار می‌دهد و تحرک اسپرم را کاهش می‌دهد. بنابراین اعتقاد‌بر این است که علت اصلی از دست دادن ظرفیت باروری مشاهده شده در طول ذخیره‌سازی مایع‌منی پرندگان است. گزارش شده‌است که برخی از متالو آنزیم‌ها (مانند لاکتات دهیدروژناز و سوربیتول دهیدروژناز) که نقش مهمی در افزایش تحرک اسپرم دارند، ممکن است حاوی روی در ساختار خود باشند. نانو اکسیروی سبب افزایش یکپارچگی غشا اسپرم آکروزوم شده و سبب حفظ سلامت غشا و بهبود عملکرد در آکروزوم می‌شود همچنین این نانو اکسید بر عملکرد میتوکندری سلول اثر گذار بوده و سبب یکپارچگی عملکرد آن می‌شود.
مواد و روش‌ها: نمونه‌گیری از 18 قطعه بوقلمون نژاد Bronze turkey دو بار در هفته و به‌مدت 5 هفته انجام‌گرفت. نمونه‌ها پس از مخلوط شدن با یکدیگر به‌منظور از بین رفتن اثرات فردی به 4 گروه تقسیم شده و مقادیر مختلف نانو اکسیدروی (صفر، 50، 100 و 200 میکروگرم در میلی‌لیتر) به رقیق‌کننده افزوده شد و تحت دمایی 4 درجه سانتی‌گراد فراسنجههای کیفی اسپرم (درصد جنبایی کل، درصد جنبایی پیش‌رونده، درصد زنده‌مانی، درصد سلامت غشا و درصد ناهنجاری) در زمان‌های مختلف ذخیره‌سازی (صفر، 12، 24 و 48 ساعت) بررسی شدند.
یافته‌ها: این نتایج با استفاده از سطوح 50، 100 و 200 میکروگرم در میلی‌لیتر نانو اکسیدروی حاصل شد. در ارتباط با درصد تحرک کل، پیش‌رونده، زنده‌مانی، سلامت غشا و ناهنجاری، بعد از 24 و 48 ساعت نانو اکسیدروی اثر معنی‌داری بر فراسنجههای ذکرشده داشت. تیمار 100 میکروگرم در میلی‌لیتر بهترین عملکرد را در طی افزایش در زمان ذخیره‌سازی از خود بر روی فراسنجههای کیفی اسپرم بوقلمون نشان داد و تیمار شاهد دارای پایین‌ترین عملکرد از این نظر بود. نتایج نشان دادند که افزودن سطوح مختلف نانو اکسیدروی در رقیق‌کننده اسپرم بوقلمون بعد از 24 و 48 ساعت باعث تفاوت معنی‌داری نسبت به تیمار شاهد شد و سبب بهبود در فراسنجههای کیفی اسپرم بوقلمون در مقایسه با تیمار شاهد شد.
نتیجه‌گیری: افزودن نانو اکسیدروی، فراسنجههای کیفی اسپرم بوقلمون را در حالت مایع (دمای 4 درجه سانتی‌گراد) بهبود بخشید و اضافه کردن مقدار 100 میکروگرم بر میلی‌لیتر نانو اکسیدروی در رقیق‌کننده اسپرم بهترین عملکرد را بین سطوح مختلف (صفر، 50، 100 و 200 میکروگرم بر میلی‌لیتر) اضافه‌شده داشت.
واژه‌های کلیدی: آنتی اکسیدان، استرس اکسیداتیو، زمان‌های ذخیره‌سازی، فراسنجههای کیفی، گونه‌های فعال اکسیژن
فهرست منابع
1. Ackland, M. L., & Michalczyk, A. A. (2016). Zinc and infant nutrition. Archives of Biochemistry and Biophysics, 611, 51-57. [DOI:10.1016/j.abb.2016.06.011]
2. Anan, H. H., Zidan, R. A., Abd EL-Baset, S. A., & Ali, M. M. (2018). Ameliorative effect of zinc oxide nanoparticles on cyclophosphamide induced testicular injury in adult rat. Tissue and Cell, 54, 80-93. [DOI:10.1016/j.tice.2018.08.006]
3. Bailey, J. L., Blodeau, J., & Cormier, N. (2000). Semen Cryopreservation in Domestic Animals: A Damaging and Capacitating Phenomenon Minireview. Journal of Andrology, 21(1), 1-7. Portico. https://onlinelibrary.wiley.com/doi/10.1002/j.1939-4640.2000.tb03268.x [DOI:10.1002/j.1939-4640.2000.tb03268.x]
4. Balasubramanian, S. K., Jittiwat, J., Manikandan, J., Ong, C.-N., Yu, L. E., & Ong, W.-Y. (2010). Biodistribution of gold nanoparticles and gene expression changes in the liver and spleen after intravenous administration in rats. Biomaterials, 31(8), 2034-2042. [DOI:10.1016/j.biomaterials.2009.11.079]
5. Bansal, A. K., & Bilaspuri, G. S. (2011). Impacts of Oxidative Stress and Antioxidants on Semen Functions. Veterinary Medicine International, 2011, 1-7. [DOI:10.4061/2011/686137]
6. Barkhordari, A., Hekmatimoghaddam, S., Jebal, I.A., Khalili, M.A., Talebi, A. and Noorani, M. (2013). Effect of zinc oxide nanoparticles on viability of human spermatozoa. Iran. J. Reprod. Med. 11, 767-771. https://civilica.com/doc/488932
7. Basioura, A., Tsakmakidis, I. A., Martinez, E. A., Roca, J., Li, J., Molina, M. F., Theodoridis, A., Boscos, C. M., & Parrilla, I. (2020). Effect of astaxanthin in extenders on sperm quality and functional variables of frozen-thawed boar semen. Animal Reproduction Science, 218, 106478. [DOI:10.1016/j.anireprosci.2020.106478]
8. Bilodeau, J. F., Chatterjee, S., Sirard, M.A. and Gagnon, C. (2000). Levels of antioxidant defenses are decreased in bovine spermatozoa after a cycle of freezing and thawing. Molecular Reproduction and Development. 55(3): 282-288.
https://doi.org/10.1002/(SICI)1098-2795(200003)55:3<282::AID-MRD6>3.0.CO;2-7 [DOI:10.1002/(SICI)1098-2795(200003)55:3%3C282::AID-MRD6%3E3.0.CO;2-7]
9. Blesbois, E., Grasseau, I., & Seigneurin, F. (2005). Membrane fluidity and the ability of domestic bird spermatozoa to survive cryopreservation. Reproduction, 129(3), 371-378. [DOI:10.1530/rep.1.00454]
10. Cerolini, S., Zaniboni, L., Maldjian, A., & Gliozzi, T. (2006). Effect of docosahexaenoic acid and α-tocopherol enrichment in chicken sperm on semen quality, sperm lipid composition and susceptibility to peroxidation. Theriogenology, 66(4), 877-886. [DOI:10.1016/j.theriogenology.2006.02.022]
11. Di Meo, S., & Venditti, P. (2020). Evolution of the Knowledge of Free Radicals and Other Oxidants. Oxidative Medicine and Cellular Longevity, 2020, 1-32. [DOI:10.1155/2020/9829176]
12. Erfani Majd, N., Hajirahimi, A., Tabandeh, M. R., & Molaei, R. (2021). Protective effects of green and chemical zinc oxide nanoparticles on testis histology, sperm parameters, oxidative stress markers and androgen production in rats treated with cisplatin. Cell and Tissue Research, 384(2), 561-575. [DOI:10.1007/s00441-020-03350-2]
13. Falchi, L., Bogliolo, L., Galleri, G., Ariu, F., Zedda, M. T., Pinna, A., Malfatti, L., Innocenzi, P., & Ledda, S. (2016). Cerium dioxide nanoparticles did not alter the functional and morphologic characteristics of ram sperm during short-term exposure. Theriogenology, 85(7), 1274-1281.e3. [DOI:10.1016/j.theriogenology.2015.12.011]
14. Falchi, L., Khalil, W. A., Hassan, M., & Marei, W. F. A. (2018). Perspectives of nanotechnology in male fertility and sperm function. International Journal of Veterinary Science and Medicine, 6(2), 265-269. [DOI:10.1016/j.ijvsm.2018.09.001]
15. Fallah A, Mohammad-Hasani A, Colagar AH. (2018). Zinc is an essential element for male fertility: a review of Zn roles in men's health, germination, sperm quality, and fertilization. Journal of reproduction & infertility. 19(2):69-81. http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/pmc6010824/
16. Fatima, A., Zaheer, T., Pal, K., Abbas, R. Z., Akhtar, T., Ali, S., & Mahmood, M. S. (2023). Zinc Oxide Nanoparticles Significant Role in Poultry and Novel Toxicological Mechanisms. Biological Trace Element Research, 202(1), 268-290. [DOI:10.1007/s12011-023-03651-x]
17. Fayez, E., El Sayed, M., Rawash, Z. M., & Salama, A. (2023). Influence of the Addition of Zinc Oxide Nanoparticles to Cryopreservation Medium for Dog Epididymal Spermatozoa. Topics in Companion Animal Medicine, 52, 100736. [DOI:10.1016/j.tcam.2022.100736]
18. Hajjar, T., Soleymani, F. and Vatanchian, M. (2020). Protective Effect of Vitamin C and Zinc as an Antioxidant Against Chemotherapy-Induced Male Reproductive Toxicity. Journal of Medicine and Life 13 (2), 138-143.
https://doi.org/10.25122/jml-2019-0107 [DOI:10.25122%2Fjml-2019-0107]
19. Halo Jr, M., Bułka, K., Antos, P. A., Greń, A., Slanina, T., Ondruška, Ľ., Tokárová, K., Massányi, M., Formicki, G., Halo, M., & Massányi, P. (2021). The effect of ZnO nanoparticles on rabbit spermatozoa motility and viability parameters in vitro. Saudi Journal of Biological Sciences, 28(12), 7450-7454. [DOI:10.1016/j.sjbs.2021.08.045]
20. Heidari, J., Seifdavati, J., Mohebodini, H., Sharifi, R.S., Benemar, H.A., (2019). Effect of nano zinc oxide on post-thaw variables and oxidative status of Moghani ram semen. Kafkas Univ. Vet. Fak. Derg. 25, 71-76. [DOI:10.9775/kvfd.2018.20349]
21. Hill, E. K., & Li, J. (2017). Current and future prospects for nanotechnology in animal production. Journal of Animal Science and Biotechnology, 8(1). [DOI:10.1186/s40104-017-0157-5]
22. Isaac, A. V., Kumari, S., Nair, R., Urs, D. R., Salian, S. R., Kalthur, G., Adiga, S. K., Manikkath, J., Mutalik, S., Sachdev, D., & Pasricha, R. (2017). Supplementing zinc oxide nanoparticles to cryopreservation medium minimizes the freeze-thaw-induced damage to spermatozoa. Biochemical and Biophysical Research Communications, 494(3-4), 656-662. [DOI:10.1016/j.bbrc.2017.10.112]
23. Isaac, M., Raibaut, L., Cepeda, C., Roux, A., Boturyn, D., Eliseeva, S. V., Petoud, S., & Sénèque, O. (2017). Luminescent Zinc Fingers: Zn‐Responsive Neodymium Near‐Infrared Emission in Water. Chemistry - A European Journal, 23(46), 10992-10996. Portico. [DOI:10.1002/chem.201703089]
24. Jahanbin, R., Yazdanshenas, P., Rahimi, M., Hajarizadeh, A., Tvrda, E., Nazari, S. A., Mohammadi-Sangcheshmeh, A., & Ghanem, N. (2020). In Vivo and In Vitro Evaluation of Bull Semen Processed with Zinc (Zn) Nanoparticles. Biological Trace Element Research, 199(1), 126-135. [DOI:10.1007/s12011-020-02153-4]
25. Kazemizadeh, A., Zare Shahneh, A., Zeinoaldini, S., Yousefi, A. R., Mehrabani Yeganeh, H., Ansari Pirsaraei, Z., & Akhlaghi, A. (2019). Effects of dietary curcumin supplementation on seminal quality indices and fertility rate in broiler breeder roosters. British Poultry Science, 60(3), 256-264. [DOI:10.1080/00071668.2019.1571165]
26. Khodaei-Motlagh, M., Masoudi, R., Karimi-Sabet, M. J., & Hatefi, A. (2022). Supplementation of sperm cooling medium with Zinc and Zinc oxide nanoparticles preserves rooster sperm quality and fertility potential. Theriogenology, 183, 36-40. [DOI:10.1016/j.theriogenology.2022.02.015]
27. Kuroda, S., Takeshima, T., Takeshima, K., Usui, K., Yasuda, K., Sanjo, H., Kawahara, T., Uemura, H., Murase, M., & Yumura, Y. (2020). Early and late paternal effects of reactive oxygen species in semen on embryo development after intracytoplasmic sperm injection. Systems Biology in Reproductive Medicine, 66(2), 122-128. [DOI:10.1080/19396368.2020.1720865]
28. Iaffaldano, N., Di Iorio, M., Miranda, M., Zaniboni, L., Manchisi, A., & Cerolini, S. (2016). Cryopreserving turkey semen in straws and nitrogen vapour using DMSO or DMA: effects of cryoprotectant concentration, freezing rate and thawing rate on post-thaw semen quality. British Poultry Science, 57(2), 264-270. [DOI:10.1080/00071668.2016.1148261]
29. Mahboub, H., Shahin, K., Zaglool, A., Roushdy, E., & Ahmed, S. (2020). Efficacy of nano zinc oxide dietary supplements on growth performance, immunomodulation and disease resistance of African catfish Clarias gariepinus. Diseases of Aquatic Organisms, 142, 147-160. [DOI:10.3354/dao03531]
30. Mohamed, M.Y., Abd El-Hafeez, A.M. and Shaarawy, A.M. (2019). Influence of adding different energy sources to the bull and ram spermatozoa exposed to different refrigerating times. Egypt. J. Sheep Goats Sci., 14(2): 1-18. https://dx.doi.org/10.21608/ejsgs.2019.56661
31. Najafi, abouzar, Daghigh Kia, H., Mehdipour, M., & Mohammadi, H. (2022). Improving the Quality of Rooster Sperm during Storage at 4 °C by adding Quercetin in the form of nano-Liposomes and NLC in a Diluting Medium. Research on Animal Production, 13(36), 104-113. http://dx.doi.org/10.52547/rap.13.36.104 [DOI:10.52547/rap.13.36.104]
32. Nazari, M., Daghigh Kia, H., & Najafi, A. (2022). The Effect of using Different Levels of Luteolin on Reducing Malondialdehyde Content and Increasing the Motility and Viability of Ross 308 Rooster Sperm during Cryopreservation and Thawing Process. Research on Animal Production, 13(35), 100-108. http://dx.doi.org/10.52547/rap.13.35.100 [DOI:10.52547/rap.13.35.100]
33. Nel, A., Xia, T., Mädler, L., & Li, N. (2006). Toxic Potential of Materials at the Nanolevel. Science, 311(5761), 622-627. [DOI:10.1126/science.1114397]
34. Orzołek, A., Rafalska, K. T., Otowska, W. A., Kordan, W., Korzekwa, A. J., & Kozłowski, K. (2021). Influence of Zinc and Manganese Nanoparticles on Selected Parameters of Turkey Spermatozoa Stored in a Liquid State at 4 °C. Animals, 11(11), 3289. [DOI:10.3390/ani11113289]
35. Powell, S. R. (2000). The Antioxidant Properties of Zinc. The Journal of Nutrition, 130(5), 1447S-1454S. [DOI:10.1093/jn/130.5.1447S]
36. Razavi, S.R., Khadivi, F., Hashemi, F. and Bakhtiari, A. (2019). Effect of zinc on spermatogenesis and sperm chromatin condensation in bleomycin, etoposide, cisplatin treated rats. Cell Journal (Yakhteh) 20 (4), 521. [DOI:10.22074%2Fcellj.2019.5522]
37. Rosenstrauch, A., Allan Degen, A., & Friedländer, M. (1994). Spermatozoa Retention by Sertoli Cells during the Decline in Fertility in Aging Roosters1. Biology of Reproduction, 50(1), 129-136. [DOI:10.1095/biolreprod50.1.129]
38. Saleem, T. H., Okasha, M., Ibrahim, H. M., Abu El-Hamd, M., Fayed, H. M., & Hassan, M. H. (2020). Biochemical Assessments of Seminal Plasma Zinc, Testis-Expressed Sequence 101 and Free Amino Acids and Their Correlations with Reproductive Hormones in Male Infertility. Biological Trace Element Research, 199(5), 1729-1742. [DOI:10.1007/s12011-020-02310-9]
39. Shahin, M. A., Khalil, W. A., Saadeldin, I. M., Swelum, A. A.-A., & El-Harairy, M. A. (2020). Comparison between the Effects of Adding Vitamins, Trace Elements, and Nanoparticles to SHOTOR Extender on the Cryopreservation of Dromedary Camel Epididymal Spermatozoa. Animals, 10(1), 78. [DOI:10.3390/ani10010078]
40. Sikka, S. C. (1996). Oxidative stress and role of antioxidants in normal and abnormal sperm function. Frontiers in Bioscience, 1(5), e78-86.
https://doi.org/10.2741/A146 [DOI:10.2741/a146]
41. Sundaram Sanjay, S., & Shukla, A. K. (2021). Free Radicals Versus Antioxidants. Potential Therapeutic Applications of Nano-Antioxidants, 1-17. [DOI:10.1007/978-981-16-1143-8_1]
42. Suri, S. S., Fenniri, H., & Singh, B. (2007). Nanotechnology-based drug delivery systems. Journal of Occupational Medicine and Toxicology, 2(1). [DOI:10.1186/1745-6673-2-16]
43. Swain, P. S., Rao, S. B. N., Rajendran, D., Dominic, G., & Selvaraju, S. (2016). Nano zinc, an alternative to conventional zinc as animal feed supplement: A review. Animal Nutrition, 2(3), 134-141. [DOI:10.1016/j.aninu.2016.06.003]
44. Tabatabaei Vakili, S., Aghaei, A., & Kazemizadeh, A. (2020). Effect of Different Concentrations of Lavandula Angustifolia Extract On Semen Quality of Rooster during Storage in Liquid Condition. Research on Animal Production, 11(27), 74-81. http://dx.doi.org/10.29252/rap.11.27.74 [DOI:10.29252/rap.11.27.74]
45. Torabi, F., Shafaroudi, M.M. and Rezaei, N. (2017). Combined protective effect of zinc oxide nanoparticles and melatonin on cyclophosphamide-induced toxicity in testicular histology and sperm parameters in adult Wistar rats. International Journal of Reproductive BioMedicine 15 (7), 403. https://civilica.com/doc/719708 [DOI:10.29252/ijrm.15.7.403]
46. Tsakmakidis, I. A., Samaras, T., Anastasiadou, S., Basioura, A., Ntemka, A., Michos, I., Simeonidis, K., Karagiannis, I., Tsousis, G., Angelakeris, M., & Boscos, C. M. (2021). Toxic and Microbiological Effects of Iron Oxide and Silver Nanoparticles as Additives on Extended Ram Semen. Animals, 11(4), 1011. [DOI:10.3390/ani11041011]
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
