دوره 13، شماره 35 - ( بهار 1401 )                   جلد 13 شماره 35 صفحات 123-118 | برگشت به فهرست نسخه ها

XML English Abstract Print


Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:

Khodadadi H, Khodaei-Motlagh M, Kazemi M, Momeni H. Comparative Assessment the Effect of Eggplant Peel (Solanum melongena) Extract on the Chilled-Stored in Farahani Ram Sperm. rap 2022; 13 (35) :118-123
URL: http://rap.sanru.ac.ir/article-1-1249-fa.html
خدادادی حمیدرضا، خدایی مطلق مهدی، کاظمی بنچناری مهدی، مومنی حمیدرضا. ارزیابی مقایسه ای تأثیر عصاره پوست بادمجان (Solanum melongena) بر اسپرم قوچ فراهانی در شرایط نگهداری سرد. پژوهشهاي توليدات دامي 1401; 13 (35) :123-118

URL: http://rap.sanru.ac.ir/article-1-1249-fa.html


گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه اراک، ایران
چکیده:   (530 مشاهده)
چکیده مبسوط
مقدمه و هدف: در پژوهش حاضر، تأثیر سطوح مختلف عصاره پوست بادمجان (SME) (Solanum melongena) بر ویژگی­های اسپرم قوچ نژاد فراهانی در شرایط نگه­داری کوتاه ­مدت مورد مطالعه قرار گرفت.
مواد و روش‌ها: گروه­های آزمایشی شامل غلظت ­های مختلف عصاره (شاهد)، 2، 4، 6 و 8 میلی گرم در میلی­ لیتر در بافر تریس بودند. نمونه ­های منی از پنج رأس قوچ جمع­ آوری شد. فراسنجه­ های اسپرماتوزوئید در شرایط مایع در زمان­های صفر، 24، 48، 72 و 96 ساعت پس از نگه­داری در دمای یخچال بررسی شدند.
یافته‌ها: یافته‌های تحقیق نشان داد که اثر متقابل عصاره پوست بادمجان و زمان ذخیره‌سازی بر تحرک اسپرم، یک پارچگی غشاء، زنده‌مانی و تحرک پیشرونده اسپرم معنی‌دار بود (0/05p<) درصد یکپارچگی غشای اسپرم، در غلظت 2 درصد عصاره بالاترین مقدار بود (0/05p<) و تحرک پیشرونده اسپرم در غلظت 2 درصد بیشتر از سایر گروه‌ها نشان داده شد. با این حال، افزودن 2 درصد اثر بهتری نسبت به سایر تیمارها داشت (0/05p<).
 نتیجه‌گیری: در نتیجه، افزودن عصاره پوست بادمجان در شرایط آزمایشگاهی به مایع منی قوچ در شرایط سرد نگهداری می‌تواند پارامترهای اسپرم را در طی ارزیابی بهبود بخشد.
متن کامل [PDF 884 kb]   (109 دریافت)    
نوع مطالعه: پژوهشي | موضوع مقاله: فیزیولوژی
دریافت: 1400/8/21 | ویرایش نهایی: 1401/4/26 | پذیرش: 1400/11/23 | انتشار: 1401/1/10

فهرست منابع
1. Chen, L., X. Yang, H. Jiao and B. Zhao. 2002. Tea catechins protect against lead-induced cytotoxicity, lipid peroxidation, and membrane fluidity in HepG2 cells. Toxicology Science, 69: 149-156. [DOI:10.1093/toxsci/69.1.149]
2. Daghigh-kia, H., R. Olfati-karaji, A. Hoseinkhani and I. Ashrafi. 2014. Effect of rosemary (Rosmarinus officinalis) extracts and glutathione antioxidants on bull semen quality after cryopreservation, 12: 98-105. [DOI:10.5424/sjar/2014121-4486]
3. Faigl, V., N. Vass, A. Jávor, M. Kulcsár, L. Solti, G. Amiridis and S. Cseh. 2012. Artificial insemination of small ruminants-A review. Acta Veterinaria Hungarica, 60: 115-129. [DOI:10.1556/avet.2012.010]
4. Forouzanfar, M., M. Fazilati, S.M. Hosseini, F. Moulavi, M. Hajian, S.A. Salehi and M.H. Nasr Esfahani. 2007. Investigation of different glycerol and egg yolk concentration on freezing Bakhtiari ram semen. Journal of Iranian Anatomical Sciences, 5: 17-25 (In Persian).
5. Hafez, D. 2010. Effect of extracts of Ginger Goots and Cinnamon Bark on fertility of male diabetic rats. Journal of American Science. 6: 940-947.
6. Hammerstedt, R.H. and J.K. Graham. 1992. Cryopreservation of poultry sperm: the enigma of glycerol. Cryobiology, 29(1): 26-38. [DOI:10.1016/0011-2240(92)90004-L]
7. Izanloo, H., A. Soleimanzadeh, M.N. Bucak, M. Imani and M. Zhandi. 2021. The effects of varying concentrations of glutathione and trehalose in improving microscopic and oxidative stress parameters in Turkey semen during liquid storage at 5° C. Cryobiology, 101: 12-19. [DOI:10.1016/j.cryobiol.2021.07.002]
8. Kefer, J.C., A. Agarwal and E. Sabanegh. 2009. Role of antioxidants in the treatment of male infertility. International Journal of Urology, 16(5): 449-457. [DOI:10.1111/j.1442-2042.2009.02280.x]
9. Leboeuf, B., B. Restall and S. Salamon. 2000a. Production and storage of goat semen for artificial insemination. Animal Reproduction Science, 62: 113-141. [DOI:10.1016/S0378-4320(00)00156-1]
10. Malo, C., L. Gil, N. Gonzalez, F. Martínez, R. Cano, I. de Blas, E. Espinosa. 2010. Anti-oxidant supplementation improves boar sperm characteristics and fertility after cryopreservation: Comparison between cysteine and rosemary (Rosmarinus officinalis). Cryobiology, 61: 142-147. [DOI:10.1016/j.cryobiol.2010.06.009]
11. Mathew, S. and T.E. Abraham. 2006. In vitro antioxidant activity and scavenging effects of Cinnamomum verum leaf extract assayed by different methodologies. Food Chemical Toxicology, 44: 198-206. [DOI:10.1016/j.fct.2005.06.013]
12. Motlagh, M.K., M. Sharafi, M. Zhandi, A. Mohammadi-Sangcheshmeh, M. Shakeri, M. Soleimani, S. Zeinoaldini. 2014. Antioxidant effect of rosemary (Rosmarinus officinalis L.) extract in soybean lecithin-based semen extender following freeze-thawing process of ram sperm. Cryobiology, 69(2): 217-22. [DOI:10.1016/j.cryobiol.2014.07.007]
13. Nantia, E.A., P.F. Moundipa, T.K. Monsees and S. Carreau. 2009. Medicinal plants as potential male anti-infertility agents: a review. Basic and Clinical Andrology, 19(3): 148-158. [DOI:10.1007/s12610-009-0030-2]
14. Nnabuihe, E.D. 2015. The effect of ethanolic extract of garcinia kola on the sperm parameters and histology of the testis of male wistar rats. Advances in Life Science and Technology, 33: 18-26.
15. Purdy, P.H. 2006b. The post-thaw quality of ram sperm held for 0 to 48 h at 5C° prior to cryopreservation. Animal Reproduction Scienc, 93: 114-123. [DOI:10.1016/j.anireprosci.2005.07.002]
16. Reproduction, A. 2006. Recent progress in the preservation of ram semen 42: 55-65. [DOI:10.1016/0378-4320(96)01544-8]
17. Revell, S.G. and R.A. Mrode. 1994. An osmotic resistance test for bovine semen. Animal Reproduction Science. Animal Reproduction Scienc, 36: 77-86. [DOI:10.1016/0378-4320(94)90055-8]
18. Salamon, S. and W.M.C. Maxwell. 2000. Storage of ram semen. Animal Reproduction Science, 1(62): 77-111. [DOI:10.1016/S0378-4320(00)00155-X]
19. Salmani, H., M.M. Nabi, H. Vaseghi-Dodaran, M.B. Rahman, A. Mohammadi-Sangcheshmeh, M. Shakeri, A. Towhidi, A. Shahneh and M. Zhandi. 2013. Effect of glutathione in soybean lecithin-based semen extender on goat semen quality after freeze-thawing. Small Ruminant Research, 112(1-3): 123-127 pp. [DOI:10.1016/j.smallrumres.2012.12.015]
20. Shahmohamadi, R., R. Sariri, M. Rasa and M. Aghamali. 2014. Antioxidant activity of gilan Mentha pulegium during growth. Pakistan Journal Biology Science, 1;17(3): 380-7 [DOI:10.3923/pjbs.2014.380.387]
21. Storey, B.T. 1997. Biochemistry of the induction and prevention of lipoperoxidative damage in human spermatozoa. Molecular Human Reproduction, 3: 203-214. [DOI:10.1093/molehr/3.3.203]
22. Sutherland, B.A., R.M.A. Rahman, I. Appleton. 2006. Mechanisms of action of green tea catechins, with a focus on ischemia-induced neurodegeneration, 17: 291-306. [DOI:10.1016/j.jnutbio.2005.10.005]
23. Tiwari, B.K., V.P. Valdramidis, C.P. O'Donnell, K. Muthukumarappan, P. Bourke and P.J. Cullen, 2009. Application of natural antimicrobials for food preservation. Journal Agriculture Food Chemistry, 57: 5987-6000. [DOI:10.1021/jf900668n]

ارسال نظر درباره این مقاله : نام کاربری یا پست الکترونیک شما:
CAPTCHA

ارسال پیام به نویسنده مسئول


بازنشر اطلاعات
Creative Commons License این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است.

کلیه حقوق این وب سایت متعلق به پژوهشهای تولیدات دامی می باشد.

طراحی و برنامه نویسی : یکتاوب افزار شرق

© 2023 CC BY-NC 4.0 | Research On Animal Production(Scientific and Research)

Designed & Developed by : Yektaweb