دوره 11، شماره 30 - ( زمستان 1399 )                   جلد 11 شماره 30 صفحات 1-10 | برگشت به فهرست نسخه ها

XML English Abstract Print


Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:

Kamrani N, Karimi A, Nemati Z, Besharati M. The Effect of Dietary Supplementation with Organic and Inorganic Selenium on Quality of Frozen-Thawed Semen in Broiler Breeder Cockerel under Oxidative Stress with Dexamethasone. rap. 2020; 11 (30) :1-10
URL: http://rap.sanru.ac.ir/article-1-1099-fa.html
کامرانی نامدار، کریمی امیر، نعمتی ذبیح اله، بشارتی مقصود. اثر مکمل سازی جیره با منابع آلی و معدنی سلنیوم بر کیفیت منی منجمد یخ گشایی شده در خروس های مادر گوشتی تحت تنش اکسیداتیو با دگزامتازون. پژوهشهاي توليدات دامي. 1399; 11 (30) :1-10

URL: http://rap.sanru.ac.ir/article-1-1099-fa.html


گروه علوم دامی دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی اهر، دانشگاه تبریز
چکیده:   (610 مشاهده)
   مطالعه حاضر به ­منظور مقایسه منابع آلی و معدنی سلنیوم در خوراک بر کیفیت اسپرم­ های منجمد یخ­ گشایی شده خروس­ های گله مادر گوشتی تحت تنش اکسیداتیو انجام شد. در این تحقیق، 24 قطعه خروس سویه راس 308 با سن 28 هفتگی در قالب طرح کاملا تصادفی با 4 تیمار و 6 پرنده در هر تیمار نگهداری شدند. تیمارهای آزمایشی عبارت بودند از: 1) گروه شاهد: جیره پایه بدون مکمل­ سازی با منابع سلنیوم و یا تزریق دگزامتازون (CON)، 2) گروه DEX: جیره پایه همراه با تزریق دگزامتازون (به مقدار 4 میلی ­گرم بر کیلوگرم وزن بدن طی 3 مرحله و به ­صورت یک روز در میان) 3) گروه DEX(OSe): گروه دریافت­کننده دگزامتازون  همانند گروه 2، همراه با جیره مکمل­ سازی شده با 0/3 میلی­ گرم سلنیوم بر کیلوگرم خوراک از سلنومتیونین به­ عنوان منبع سلنیوم آلی و 4) گروه DEX (ISe): مانند گروه3، اما جیره با 0/3 میلی­ گرم سلنیوم بر کیلوگرم خوراک از سلنیت سدیم به ­عنوان منبع سلنیوم معدنی مکمل ­سازی شد. پس از اسپرم­گیری فرآیند انجماد اسپرم با کمک رقیق ­کننده بلتسویل مدیفای شده انجام گرفت. پس از یخ­گشایی اسپرم ­ها، فرآسنجه های حرکتی با کمک سیستم آنالیز کامپیوتری انجام شد. نتایج نشان داد که مکمل­ سازی جیره با سلنیوم آلی در پرندگان تحت تنش با دگزامتازون (DEX(OSe))، سبب بهبود تحرک کل و تحرک پیش­رونده اسپرم نسبت به سایر گروه­های آزمایشی شد (0/05>p) اگرچه DEX(OSe) تفاوت معنی­ داری با گروه شاهد در حرکت پیش­رونده اسپرم، نداشت (0/05<p). همچنین مصرف سلنیوم معدنی (DEX (ISe)) تاثیر معنی­داری بر بهبود تحرک کل و تحرک پیش­رونده اسپرم، نسبت به گروه DEX نداشت (0/05<p). از طرف دیگر، نه­تنها زنده­مانی و یکپارچگی غشای پلاسمایی اسپرم، بلکه پارامترهای بیوشیمیایی (گلوتاتیون پراکسیداز و سوپراکسید دیسموتاز) نیز در گروه DEX(OSe) نسبت به سایر گروه­ های آزمایشی بالاتر بود (0/05>p). به طور کلی به ­نظر می ­رسد، مکمل ­سازی جیره خروس­ های مادر با سلنیوم آلی که تحت شرایط تنش  با تزریق دگزامتازون قرار گرفته باشند، می ­تواند موجب بهبود کیفیت اسپرم نسبت به سلنیوم معدنی شود.
متن کامل [PDF 629 kb]   (150 دریافت)    
نوع مطالعه: پژوهشي | موضوع مقاله: تغذیه طیور
دریافت: 1399/1/17 | ویرایش نهایی: 1399/12/19 | پذیرش: 1399/2/24 | انتشار: 1399/12/19

فهرست منابع
1. Agarwal, A., K.P. Nallella, S.S. Allamaneni and T.M. Said. 2004. Role of antioxidants in treatment of male infertility: an overview of the literature. Reproductive Biomedicine Online, 8: 616-627. [DOI:10.1016/S1472-6483(10)61641-0]
2. Ahangari, Y., B. Parizadian and M. Zamani. 2013. The impact of organic selenium supplementation on rooster semen quality in liquid condition. Poultry Science Journal, 1: 23-31.
3. Amini, M.R., H. Kohram, A. Zare-Shahaneh, M. Zhandi, H. Sharideh and M.M. Nabi. 2015. The effects of different levels of catalase and superoxide dismutase in modified Beltsville extender on rooster post thawed sperm quality. Cryobiology, 70: 226-232. [DOI:10.1016/j.cryobiol.2015.03.001]
4. Avunduk, A.M., S. Yardımcı, M.C. Avunduk, L. Kurnaz and M. Cengiz. 2000. A Possible Mechanism of X-Ray-Induced Injury in Rat Lens. Japanese Journal of Ophthalmology, 44: 88-91. [DOI:10.1016/S0021-5155(99)00169-0]
5. Badade, Z., K. More and J. Narshetty. 2011. Oxidative stress adversely affects spermatogenesis in male infertility. Biomedical Research, 22(3): 319-322.
6. Baumber, J., B.A. Ball, J.J. Linfor and S.A. Meyers. 2003. Reactive oxygen species and cryopreservation promote DNA fragmentation in equine spermatozoa. Journal of Andrology, 24: 621 628. [DOI:10.1002/j.1939-4640.2003.tb02714.x]
7. Brouwers, J.F and B.M. Gadella. 2003. In situ detection and localization of lipid peroxidation in individual bovine sperm cells. Free Radical Biology Medicine, 35: 1382-1391. [DOI:10.1016/j.freeradbiomed.2003.08.010]
8. Burrows, W. and J. Quinn. 1937. The collection of spermatozoa from the domestic fowl and turkey. Poultry Science, 16: 19-24. [DOI:10.3382/ps.0160019]
9. Carvalho, F., J. Stringhini, N. Leandro, R. Jardim, W. Cunha and M. Café. 2003. Influência das linhagens e idades de poedeiras comerciais na qualidade interna e da casca para ovos armazenados sobre diferentes temperaturas. Revista Brasileira de Ciência Avícola, 101: 101.
10. Cerolini, S., A. Maldjian, P. Surai and R. Noble. 2000. Viability, susceptibility to peroxidation and fatty acid composition of boar semen during liquid storage. Animal Reproduction Science, 58: 99-111. [DOI:10.1016/S0378-4320(99)00035-4]
11. Chandra, G., A. Aggarwal, A. Singh, A. Singh, M. Kumar, R. Kushwaha and Y. Singh. 2012. Oxidative stress in sperm biology-a review. Agricultural Reviews, 33: 54-61.
12. Cunningham, M.L., P.S. Ringrose and B.R. Lokesh. 1984. Inhibition of the genotoxicity of bleomycin by superoxide dismutase. Mutation Research/Genetic Toxicology, 135: 199-202. [DOI:10.1016/0165-1218(84)90122-8]
13. Da Silva Maia, M., S.D. Bicudo, H.C. Azevedo, C.C. Sicherle, D.B. Sousa and L. Rodello. 2009. Motility and viability of ram sperm cryopreserved in a Tris-egg yolk extender supplemented with anti oxidants. Small Ruminant Research, 85: 85-90. [DOI:10.1016/j.smallrumres.2009.07.001]
14. Davis, C.D., P.A. Tsuji and J.A. Milner. 2012. Selenoproteins and cancer prevention. Annual Review of Nutrition, 32: 73-95. [DOI:10.1146/annurev-nutr-071811-150740]
15. Dimitrov, S., V. Atanasov, P. Surai and S. Denev. 2007. Effect of organic selenium on turkey semen quality during liquid storage. Animal Reproduction Science, 100: 311-317. [DOI:10.1016/j.anireprosci.2006.07.007]
16. Duru, N.K., M. Morshedi and S. Oehninger. 2000. Effects of hydrogen peroxide on DNA and plasma membrane integrity of human spermatozoa. Fertility Sterility, 74: 1200-1207. [DOI:10.1016/S0015-0282(00)01591-0]
17. Ebeid, T. 2009. Organic selenium enhances the antioxidative status and quality of cockerel semen under high ambient temperature. British Poultry Science, 50: 641-647. [DOI:10.1080/00071660903303415]
18. Edens, F. 2002. Practical applications for selenomethionine: broiler breeder reproduction. In: Proceeding of the 18th annual symposium: nutritional biotechnology in the feed and food industry. Nottingham University Press, Nottingham, 29-42.
19. Eid, Y., T. Ebeid and H. Younis. 2006. Vitamin E supplementation reduces dexamethasone-induced oxidative stress in chicken semen. British Poultry Science, 47: 350-356. [DOI:10.1080/00071660600753912]
20. Evans, G. and W.C. Maxwell. 1987. Salamons' artificial insemination of sheep and goats. Butterworths.
21. Fairweather-Tait, S.J., R. Collings and R. Hurst. 2010. Selenium bioavailability: current knowledge and future research requirements. The American Journal of Clinical Nutrition, 91: 1484S-1491S. [DOI:10.3945/ajcn.2010.28674J]
22. Froman, D. and R. Thurston. 1981. Chicken and turkey spermatozoal superoxide dismutase: a comparative study. Biology of Reproduction, 24: 193-200. [DOI:10.1095/biolreprod24.1.193]
23. Hansen, J. and Y. Deguchi. 1996. Selenium and fertility in animals and man--a review. Acta Veterinaria Scandinavica, 37: 19-30. [DOI:10.1186/BF03548116]
24. Hill, K.E., Y. Xia, B. Åkesson, M.E. Boeglin and R.F. Burk. 1996. Selenoprotein P concentration in plasma is an index of selenium status in selenium-deficient and selenium-supplemented Chinese subjects. The Journal of Nutrition, 126: 138-145. [DOI:10.1093/jn/126.1.138]
25. Jamali, N.U., A. Kaka, P. Khatri, M. Malhi, M. Naeem, A.A. Memon, R.R. Kaleri, H. Janyaro and D.H. Kalhoro. 2019. Effect of in vitro selenium addition to the semen extender on the spermatozoa characteristics before and after freezing in Kundhi Buffalo bull and in vivo fertility rate. Pakistan Journal of Zoology, 51: 317-323. [DOI:10.17582/journal.pjz/2019.51.1.317.323]
26. Kefer, J.C., A. Agarwal and E. Sabanegh. 2009. Role of antioxidants in the treatment of male infertility. International Journal of Urology, 16: 449-457. [DOI:10.1111/j.1442-2042.2009.02280.x]
27. King, L. M., D.R. Holsberger and A.M. Donnoghue. 2000. Correlation of CASA velocity and linearity parameters with sperm mobility phenotype in turkeys. Journal of Andrology, 21: 65-71.
28. Kryukov, G.V., S. Castellano, S.V. Novoselov, A.V. Lobanov, O. Zehtab, R. Guigó and V.N. Gladyshev. 2003. Characterization of mammalian selenoproteomes. Science, 300: 1439-1443. [DOI:10.1126/science.1083516]
29. Li, M.W., S. Meyers, T.L. Tollner and J.W. Overstreet. 2007. Damage to chromosomes and DNA of rhesus monkey sperm following cryopreservation. Journal of Andrology, 28: 493-501. [DOI:10.2164/jandrol.106.000869]
30. Marin-Guzman, J., D. Mahan and R. Whitmoyer. 2000. Effect of dietary selenium and vitamin E on the ultrastructure and ATP concentration of boar spermatozoa, and the efficacy of added sodium selenite in extended semen on sperm motility. Journal of Animal Science, 78: 1544-1550. [DOI:10.2527/2000.7861544x]
31. Min, Y., Z. Niu, T. Sun, Z. Wang, P. Jiao, B. Zi, P. Chen, D. Tian and F. Liu. 2018. Vitamin E and vitamin C supplementation improves antioxidant status and immune function in oxidative-stressed breeder roosters by up-regulating expression of GSH-Px gene. Poultry Science, 97: 1238-1244. [DOI:10.3382/ps/pex417]
32. Nabi, M.M., H. Kohram, M. Zhandi, H. Mehrabani-Yeganeh, H. Sharideh, A. Zare-Shahaneh and V. Esmaili. 2016. Comparative evaluation of Nabi and Beltsville extenders for cryopreservation of rooster semen. Cryobiology, 72: 47-52. [DOI:10.1016/j.cryobiol.2015.11.005]
33. Olson, G.E., V.P. Winfrey, K.E. Hill and R.F. Burk. 2004. Sequential development of flagellar defects in spermatids and epididymal spermatozoa of selenium-deficient rats. Reproduction, 127: 335-342. [DOI:10.1530/rep.1.00103]
34. Partyka, A., E. Łukaszewicz and W. Niżański. 2012. Lipid peroxidation and antioxidant enzymes activity in avian semen. Animal Reproduction Science, 134: 184-190. [DOI:10.1016/j.anireprosci.2012.07.007]
35. Peris, S.I., J.F. Bilodeau, M. Dufour and J.L. Bailey. 2007. Impact of cryopreservation and reactive oxygen species on DNA integrity, lipid peroxidation, and functional parameters in ram sperm. Molecular Reproduction Development, 74: 878-892. [DOI:10.1002/mrd.20686]
36. Petrujkić, B., D. Šefer, I. Jovanović, M. Jovičin, S. Janković, G. Jakovljević, R. Beier and R. Anderson. 2014. Effects of commercial selenium products on glutathione peroxidase activity and semen quality in stud boars. Animal Feed Science Technology, 197: 194-205. [DOI:10.1016/j.anifeedsci.2014.09.001]
37. Pratt, W.D., F.A. Murray, H. Conrad, A. Moxon and J.E. Kinder. 1980. Effects of selenium supplementation on bull sperm metabolism in vitro. Theriogenology, 13: 369-379. [DOI:10.1016/0093-691X(80)90049-7]
38. Revell, S., and R. Mrode. 1994. An osmotic resistance test for bovine semen. Animal Reproduction Science, 36: 77-86. [DOI:10.1016/0378-4320(94)90055-8]
39. Shi, L., H. Zhao, Y. Ren, X. Yao, R. Song and W. Yue. 2014. Effects of different levels of dietary selenium on the proliferation of spermatogonial stem cells and antioxidant status in testis of roosters. Animal Reproduction Science, 149: 266-272. [DOI:10.1016/j.anireprosci.2014.07.011]
40. Spallholz, J.E. 1997. Free radical generation by selenium compounds and their prooxidant toxicity. Biomedical and Environmental Sciences, 10: 260-270.
41. Surai, P., E. Blesbois, I. Grasseau, T. Chalah, J.P. Brillard, G. Wishart, S. Cerolini and N. Sparks. 1998. Fatty acid composition, glutathione peroxidase and superoxide dismutase activity and total antioxidant activity of avian semen. Comparative Biochemistry Physiology Part B: Biochemistry Molecular Biology, 120: 527-533. [DOI:10.1016/S0305-0491(98)10039-1]
42. Surai, P., I. Kostjuk, G. Wishart, A. Macpherson, B. Speake, R. Noble, I. Ionov and E. Kutz. 1998. Effect of vitamin E and selenium supplementation of cockerel diets on glutathione peroxidase activity and lipid peroxidation susceptibility in sperm, testes, and liver. Biological Trace Element Research, 64: 119-132. [DOI:10.1007/BF02783329]
43. Surai, P.F. 2002. Natural antioxidants in avian nutrition and reproduction. Nottingham University Press Nottingham.
44. Surai, P.F. 2006. Selenium in nutrition and health. Nottingham university press Nottingham.
45. Surai, P.F. and V.I. Fisinin. 2015. Selenium in pig nutrition and reproduction: Boars and semen quality. A Review. Asian-Australasian Journal of Animal Sciences, 28: 730. [DOI:10.5713/ajas.14.0593]
46. Underwood, E.J. 1999. The Mineral Nutrition of Livestock. Cabi. [DOI:10.1079/9780851991283.0000]
47. Ursini, F., S. Heim, M. Kiess, M. Maiorino, A. Roveri, J. Wissing and L. Flohé. 1999. Dual function of the selenoprotein PHGPx during sperm maturation. Science, 285: 1393-1396. [DOI:10.1126/science.285.5432.1393]
48. Ursini, F., M. Maiorino and A. Roveri. 1997. Phospholipid hydroperoxide glutathione peroxidase (PHGPx): more than an antioxidant enzyme? Biomedical environmental sciences: BES, 10: 327-332.
49. Watson, P.F. 2000. The causes of reduced fertility with cryopreserved semen. Animal Reproduction Science, 60: 481-492. [DOI:10.1016/S0378-4320(00)00099-3]
50. Wu, S., J. Oldfield, P. Whanger and P. Weswig. 1973. Effect of selenium, vitamin E, and antioxidants on testicular function in rats. Biology of Reproduction, 8: 625-629. [DOI:10.1093/biolreprod/8.5.625]

ارسال نظر درباره این مقاله : نام کاربری یا پست الکترونیک شما:
CAPTCHA

ارسال پیام به نویسنده مسئول


کلیه حقوق این وب سایت متعلق به پژوهشهای تولیدات دامی می باشد.

طراحی و برنامه نویسی : یکتاوب افزار شرق

© 2021 CC BY-NC 4.0 | Research On Animal Production(Scientific and Research)

Designed & Developed by : Yektaweb