دوره 14، شماره 41 - ( پاییز 1402 )
جلد 14 شماره 41 صفحات 12-1 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Mohammadan Mosammam R, Farahavar A, Yavari M, Aliarabi H. (2023). The Effect of Injection of GnRH Dissolved in Aluminum Hydroxide Gel Nanoparticles or Propyleneglycol on Estrus Synchronization, Ovulation Induction and Fertility Outcome after Artificial Insemination in Mehraban Ewes. rap. 14(41), 1-12. doi:10.61186/rap.14.41.1
URL: http://rap.sanru.ac.ir/article-1-1354-fa.html
URL: http://rap.sanru.ac.ir/article-1-1354-fa.html
محمدیان مصمم رقیه، فرح‌آور عباس، یاوری مرتضی، علی عربی حسن. مقایسه اثر تزریق GnRH حل شده در نانو ذرات ژل هیدروکسید آلومینیوم و پروپیلن گلیکول بر همزمانسازی چرخه فحلی، القاء تخمک‌ریزی و بازده تولیدمثلی پس از تلقیح مصنوعی در گوسفند نژاد مهربان پژوهشهاي توليدات دامي 1402; 14 (41) :12-1 10.61186/rap.14.41.1
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه بوعلی سینا، همدان، ایران
چکیده: (837 مشاهده)
چکیده مبسوط
مقدمه و هدف: منع استفاده از گنادوتروپین جفت اسبی (eCG) در همزمانسازی فحلی از طرف کمیته اخلاق حمایت از حقوق حیوانات، باعث توسعه برنامه‌های جایگزین شده است. یکی از این برنامه‌های جایگزین استفاده از تیمار کوتاهمدت پروژسترون و تزریق تک دوز هورمون آزاد کننده گنادوتروپین (GnRH) هنگام قطع تیمار پروژسترونی است. نیمه عمر GnRH بسیار کوتاه است و سریعاً پس از تزریق توسط پپتیدازها تجزیه و یا توسط گلومرولها دفع میشود. یکی از رهیافت‌های پیشنهادی طولانی اثر کردن GnRH و حفظ آن در برابر پپتیدازها است. پروپیلن گلیکول و نانو ذرات ژل هیدروکسید آلومینیوم ترکیبات پروتئینی را جذب و سرعت رهش آنها را کاهش میدهند. بنابراین هدف این پژوهش مقایسه اثر تزریق GnRH حلشده در ژل نانوهیدروکسید آلومینیوم و پروپیلن گلیکول بر همزمانسازی چرخه فحلی، القاء تخمک‌ریزی و بازده تولیدمثلی پس از تلقیح مصنوعی در گوسفند نژاد مهربان بود.
مواد و روش‌ها: در فصل تولیدمثلی تعداد 67 رأس میش بالغ غیرآبستن (با میانگین وزنی5/33±57/72 کیلوگرم، سن 2-4 سال و نمره بدنی 3/5-3) انتخاب و با اسفنج پروژسترونی برای یک دوره کوتاه مدت 7روزه تیمار شدند. همه میش‌ها هنگام برداشت اسفنج 5 میلی‌گرم PGF2α (دینوپروست) دریافت و سپس بهطور تصادفی به چهار تیمار تقسیم شدند. در تیمار 1 هر رأس میش در زمان برداشت اسفنج 400 واحد بینالمللی eCG (به‌صورت عضلانی) نیز دریافت کرد. در تیمار 2 و 3 هر رأس میش 36 ساعت پس از برداشت اسفنج بهترتیب 50 میکروگرم GnRH حل شده در ژل نانوهیدروکسید آلومینیوم و یا پروپیلن گلیکول (به‌صورت زیرجلدی) دریافت کرد. در تیمار 4 هر رأس میش 56 ساعت پس از خارجسازی اسفنج 50 میکروگرم GnRH حل شده در آب مقطر (به‌صورت عضلانی) دریافت کرد. همه میش‌ها 56 ساعت پس از برداشت اسفنج بهروش لاپاراسکوپی تلقیح شدند. در زمان تلقیح، تعداد میش‌های فحل ثبت و وضعیت فحلی بر اساس تونوسیته رحم درجهبندی شد. غلظت استرادیول (E2) پلاسما 36 و 56 ساعت پس از برداشت اسفنج اندازهگیری شد. غلظت پروژسترون (P4) پلاسما و میزان تخمک‌ریزی نیز 11 روز پس از تلقیح تعیین شد. میزان گیرایی، باروری و زایش گله نیز پس از زایمان محاسبه شد.
یافته‌ها: درصد بروز فحلی، کیفیت فحلی، درصد وقوع تخمک ریزی، تعداد تخمک‌های آزاد شده بهازای هر میش و غلظت P4 پلاسما بین تیمارها مشابه بود. در تیمار 1 غلظت E2 پلاسما 36 ساعت بعد از برداشت اسفنج بیشتر بود (0/05>p) اما، 56 ساعت بعد از برداشت اسفنج بین تیمارها تفاوتی نداشت. در تیمار3 درصد گیرایی نسبت به میش‌های تخمک‌ریزی کرده بهطور معنیداری بیشتر از تیمار 2 بود (0/05>p). درصد گیرایی نسبت به میش‌های تلقیح شده، درصد باروری و برهزایی در تیمار 3 بیشتر از سایر تیمارها بود اگرچه این تفاوت از نظر آماری معنیدار نبود.
مقدمه و هدف: منع استفاده از گنادوتروپین جفت اسبی (eCG) در همزمانسازی فحلی از طرف کمیته اخلاق حمایت از حقوق حیوانات، باعث توسعه برنامه‌های جایگزین شده است. یکی از این برنامه‌های جایگزین استفاده از تیمار کوتاهمدت پروژسترون و تزریق تک دوز هورمون آزاد کننده گنادوتروپین (GnRH) هنگام قطع تیمار پروژسترونی است. نیمه عمر GnRH بسیار کوتاه است و سریعاً پس از تزریق توسط پپتیدازها تجزیه و یا توسط گلومرولها دفع میشود. یکی از رهیافت‌های پیشنهادی طولانی اثر کردن GnRH و حفظ آن در برابر پپتیدازها است. پروپیلن گلیکول و نانو ذرات ژل هیدروکسید آلومینیوم ترکیبات پروتئینی را جذب و سرعت رهش آنها را کاهش میدهند. بنابراین هدف این پژوهش مقایسه اثر تزریق GnRH حلشده در ژل نانوهیدروکسید آلومینیوم و پروپیلن گلیکول بر همزمانسازی چرخه فحلی، القاء تخمک‌ریزی و بازده تولیدمثلی پس از تلقیح مصنوعی در گوسفند نژاد مهربان بود.
مواد و روش‌ها: در فصل تولیدمثلی تعداد 67 رأس میش بالغ غیرآبستن (با میانگین وزنی5/33±57/72 کیلوگرم، سن 2-4 سال و نمره بدنی 3/5-3) انتخاب و با اسفنج پروژسترونی برای یک دوره کوتاه مدت 7روزه تیمار شدند. همه میش‌ها هنگام برداشت اسفنج 5 میلی‌گرم PGF2α (دینوپروست) دریافت و سپس بهطور تصادفی به چهار تیمار تقسیم شدند. در تیمار 1 هر رأس میش در زمان برداشت اسفنج 400 واحد بینالمللی eCG (به‌صورت عضلانی) نیز دریافت کرد. در تیمار 2 و 3 هر رأس میش 36 ساعت پس از برداشت اسفنج بهترتیب 50 میکروگرم GnRH حل شده در ژل نانوهیدروکسید آلومینیوم و یا پروپیلن گلیکول (به‌صورت زیرجلدی) دریافت کرد. در تیمار 4 هر رأس میش 56 ساعت پس از خارجسازی اسفنج 50 میکروگرم GnRH حل شده در آب مقطر (به‌صورت عضلانی) دریافت کرد. همه میش‌ها 56 ساعت پس از برداشت اسفنج بهروش لاپاراسکوپی تلقیح شدند. در زمان تلقیح، تعداد میش‌های فحل ثبت و وضعیت فحلی بر اساس تونوسیته رحم درجهبندی شد. غلظت استرادیول (E2) پلاسما 36 و 56 ساعت پس از برداشت اسفنج اندازهگیری شد. غلظت پروژسترون (P4) پلاسما و میزان تخمک‌ریزی نیز 11 روز پس از تلقیح تعیین شد. میزان گیرایی، باروری و زایش گله نیز پس از زایمان محاسبه شد.
یافته‌ها: درصد بروز فحلی، کیفیت فحلی، درصد وقوع تخمک ریزی، تعداد تخمک‌های آزاد شده بهازای هر میش و غلظت P4 پلاسما بین تیمارها مشابه بود. در تیمار 1 غلظت E2 پلاسما 36 ساعت بعد از برداشت اسفنج بیشتر بود (0/05>p) اما، 56 ساعت بعد از برداشت اسفنج بین تیمارها تفاوتی نداشت. در تیمار3 درصد گیرایی نسبت به میش‌های تخمک‌ریزی کرده بهطور معنیداری بیشتر از تیمار 2 بود (0/05>p). درصد گیرایی نسبت به میش‌های تلقیح شده، درصد باروری و برهزایی در تیمار 3 بیشتر از سایر تیمارها بود اگرچه این تفاوت از نظر آماری معنیدار نبود.
نتیجه‌گیری کلی: آهسته رهش کردن GnRH با حل کردن آن در پروپیلن گلیکول و یا نانوذرات ژل هیدروکسید آلومینیوم مشابه eCG باعث بروز فحلی، تخمک‌ریزی میشود اما پروپیلن گلیکول کارایی بهتری در همزمانسازی حیوان برای تلقیح مصنوعی دارد
نوع مطالعه: پژوهشي |
موضوع مقاله:
فیزیولوژی
دریافت: 1401/10/28 | ویرایش نهایی: 1402/9/25 | پذیرش: 1402/3/3 | انتشار: 1402/9/22
دریافت: 1401/10/28 | ویرایش نهایی: 1402/9/25 | پذیرش: 1402/3/3 | انتشار: 1402/9/22
فهرست منابع
1. Amini, Y., Moradi, B., & Fasihi-Ramandi, M. (2017). Aluminum hydroxide nanoparticles show strong activity to stimulate Th-1 immune response against tuberculosis. Artificial cells, nanomedicine, and biotechnology, 45(7), 1331-1335. 10.1080/21691401.2016.1233111. [DOI:10.1080/21691401.2016.1233111]
2. Baird, D. T. (1983). Factors regulating the growth of the preovulatory follicle in the sheep and human. Reproduction, 69(1), 343-352. 0022-4251/83/050343-10S02-00/0. [DOI:10.1530/jrf.0.0690343]
3. Bazybek, N., Wei, Y., & Ma, G. (2022). Advances in encapsulating gonadotropin-releasing hormone agonists for controlled release: a review. Journal of Microencapsulation, 39(5), 452-466. 10.1080/02652048.2022.2100934. [DOI:10.1080/02652048.2022.2100934]
4. Blaschi, W., Lunardelli, P. A., Marinho, L. S., Max, M. C., Santos, G. M., Silva-Santos, K. C., ... & Seneda, M. M. (2014). Effects of progestagen exposure duration on estrus synchronization and conception rates of crossbreed ewes undergoing fixed time artificial insemination. Journal of veterinary science, 15(3), 433-437. 10.4142/jvs.2014.15.3.433. [DOI:10.4142/jvs.2014.15.3.433]
5. Callahan, P. M., Shorter, A. L., & Hem, S. L. (1991). The importance of surface charge in the optimization of antigen-adjuvant interactions. Pharmaceutical research, 8, 851-858. 10.1023/A:1015843210358. [DOI:10.1023/A:1015843210358]
6. Campbell, B. K., Kendall, N. R., & Baird, D. T. (2007). The effect of the presence and pattern of luteinizing hormone stimulation on ovulatory follicle development in sheep. Biology of reproduction, 76(4), 719-727. 10.1095/biolreprod.106.053462. [DOI:10.1095/biolreprod.106.053462]
7. Chang, M. F., White, J. L., Nail, S. L., & Hem, S. L. (1997). Role of the electrostatic attractive force in the adsorption of proteins by aluminum hydroxide adjuvant. PDA Journal of Pharmaceutical Science and Technology, 51(1), 25-29.
8. Deligiannis, C., Valasi, I., Rekkas, C. A., Goulas, P., Theodosiadou, E., Lainas, T., & Amiridis, G. S. (2005). Synchronization of ovulation and fixed time intrauterine insemination in ewes. Reproduction in domestic animals, 40(1), 6-10. 10.1111/j.1439-0531.2004.00534.x. [DOI:10.1111/j.1439-0531.2004.00534.x]
9. Fierro, S., Olivera-Muzante, J., Gil, J., & Viñoles, C. (2011). Effects of prostaglandin administration on ovarian follicular dynamics, conception, prolificacy, and fecundity in sheep. Theriogenology, 76(4), 630-639. 10.1016/j.theriogenology.2011.03.016. [DOI:10.1016/j.theriogenology.2011.03.016]
10. Fukui, Y., Itagaki, R., Ishida, N., & Okada, M. (2001). Effect of different hCG treatments on fertility of estrus-induced and artificially inseminated ewes during the non-breeding season. Journal of Reproduction and Development, 47(4), 189-195. 10.1262/jrd.47.189. [DOI:10.1262/jrd.47.189]
11. Gonzalez-Bulnes, A., Menchaca, A., Martin, G. B., & Martinez-Ros, P. (2020). Seventy years of progestagen treatments for management of the sheep oestrous cycle: Where we are and where we should go. Reproduction, Fertility and Development, 32(5), 441-452. 10.1071/RD18477. [DOI:10.1071/RD18477]
12. Gonzalez-Bulnes, A., Veiga-Lopez, A., Garcia, P., Garcia-Garcia, R. M., Ariznavarreta, C., Sanchez, M. A.,... & Flores, J. M. (2005). Effects of progestagens and prostaglandin analogues on ovarian function and embryo viability in sheep. Theriogenology, 63(9), 2523-2534. 10. 1016/ j. theriogenology.2004. 10.013. [DOI:10.1016/j.theriogenology.2004.10.013]
13. Hashem, N. M., El-Zarkouny, S. Z., Taha, T. A., & Abo-Elezz, Z. R. (2015). Oestrous response and characterization of the ovulatory wave following oestrous synchronization using PGF2α alone or combined with GnRH in ewes. Small Ruminant Research, 129, 84-87. 10.1016/j.smallrumres. 2015.06.003. [DOI:10.1016/j.smallrumres.2015.06.003]
14. Hashem, N. M., & Sallam, S. M. (2020). Reproductive performance of goats treated with free gonadorelin or nanoconjugated gonadorelin at estrus. Domestic Animal Endocrinology, 71, 106390. 10.1016/j.domaniend.2019.106390. [DOI:10.1016/j.domaniend.2019.106390]
15. Hashem, N. M., & Gonzalez-Bulnes, A. (2020). State-of-the-art and prospective of nanotechnologies for smart reproductive management of farm animals. Animals, 10(5), 840. 10.3390/ani10050840. [DOI:10.3390/ani10050840]
16. He, P., Zou, Y., & Hu, Z. (2015). Advances in aluminum hydroxide-based adjuvant research and its mechanism. Human vaccines & immunotherapeutics, 11(2), 477-488. 10.1080/21645515. 2014.1004026. [DOI:10.1080/21645515.2014.1004026]
17. Heimlich, J. M., Regnier, F. E., White, J. L., & Hem, S. L. (1999). The in vitro displacement of adsorbed model antigens from aluminium-containing adjuvants by interstitial proteins. Vaccine, 17(22), 2873-2881. 10.1016/S0264-410X(99)00126-7. [DOI:10.1016/S0264-410X(99)00126-7]
18. Kamani, A., Khodaei- motlagh, M., Kazemi, M., and Moradi, M.H. (2020). Effect of Pregnant Mare Serum Gonadotropine (Pmsg) and Gonadotropin-Releasing Hormone (Gnrh) Combination on Estrous Synchronization in Farahani Ewes. Research on Animal Production, 11(27), 82-87 (In Persian). 10.29252/rap.11.27.82. [DOI:10.29252/rap.11.27.82]
19. Khan, T. H., Beck, N. F., & Khalid, M. (2007). The effects of GnRH analogue (buserelin) or hCG (Chorulon) on Day 12 of pregnancy on ovarian function, plasma hormone concentrations, conceptus growth and placentation in ewes and ewe lambs. Animal reproduction science, 102(3-4), 247-257. 10.1016/j.anireprosci.2006.11.007. [DOI:10.1016/j.anireprosci.2006.11.007]
20. Khan, T. H., Hastie, P. M., Beck, N. F., & Khalid, M. (2003). hCG treatment on day of mating improves embryo viability and fertility in ewe lambs. Animal reproduction science, 76(1-2), 81-89. 10.1016/S0378-4320(02)00194-X. [DOI:10.1016/S0378-4320(02)00194-X]
21. Kimura, K. (2016). Superovulation with a single administration of FSH in aluminum hydroxide gel: a novel superovulation method for cattle. Journal of reproduction and development, 62(5), 423-429. 10.1262/jrd.2016-066. [DOI:10.1262/jrd.2016-066]
22. Kumar, P., & Sait, S. F. (2011). Luteinizing hormone and its dilemma in ovulation induction. Journal of human reproductive sciences, 4(1), 2. 10.4103/0974-1208.82351. [DOI:10.4103/0974-1208.82351]
23. Kumar, P., & Sharma, A. (2014). Gonadotropin-releasing hormone analogs: Understanding advantages and limitations. Journal of human reproductive sciences, 7(3), 170. 10.4103/0974-1208.142476. [DOI:10.4103/0974-1208.142476]
24. Li, X., Aldayel, A. M., & Cui, Z. (2014). Aluminum hydroxide nanoparticles show a stronger vaccine adjuvant activity than traditional aluminum hydroxide microparticles. Journal of controlled release, 173, 148-157. 10.1016/j.jconrel.2013.10.032. [DOI:10.1016/j.jconrel.2013.10.032]
25. Manteca Vilanova, X., De Briyne, N., Beaver, B., & Turner, P. V. (2019). Horse welfare during equine chorionic gonadotropin (eCG) production. Animals, 9(12), 1053. 10.3390/ani9121053. [DOI:10.3390/ani9121053]
26. Martemucci, G., & D'Alessandro, A. G. (2011). Synchronization of oestrus and ovulation by short time combined FGA, PGF2α, GnRH, eCG treatments for natural service or AI fixed-time. Animal reproduction science, 123(1-2), 32-39. 10.1016/j.anireprosci.2010.11.007. [DOI:10.1016/j.anireprosci.2010.11.007]
27. Martinez-Ros, P., & Gonzalez-Bulnes, A. (2019). Efficiency of CIDR-based protocols including GnRH instead of eCG for estrus synchronization in sheep. Animals, 9(4), 146. 10.3390/ani9040146. [DOI:10.3390/ani9040146]
28. Masoumi, R., Shahmoradi, M., Rostami, B. and Bagherinia Amiri, M. (2018). Evaluation of Reproductive Performance of Afshari Ewes with a Short Estrus Synchronization Program in Non Breeding Season. Research On Animal Production, 9(21), 80-85 (In Persian). 10.29252/rap.9.21.80. [DOI:10.29252/rap.9.21.80]
29. Olivera-Muzante, J., Gil, J., Viñoles, C., & Fierro, S. (2013). Reproductive outcome with GnRH inclusion at 24 or 36 h following a prostaglandin F2α-based protocol for timed AI in ewes. Animal reproduction science, 138(3-4), 175-179. 10.1016/j.anireprosci.2013.02.013. . [DOI:10.1016/j.anireprosci.2013.02.013]
30. Pierson, J. T., Baldassarre, H., Keefer, C. L., & Downey, B. R. (2003). Influence of GnRH administration on timing of the LH surge and ovulation in dwarf goats. Theriogenology, 60(3), 397-406. [DOI:10.1016/S0093-691X(03)00037-2]
31. Riaz, H., Sattar, A., Arshad, M. A., & Ahmad, N. (2012). Effect of synchronization protocols and GnRH treatment on the reproductive performance in goats. Small Ruminant Research, 104(1-3), 151-155. 10.1016/j.smallrumres.2011.10.008. [DOI:10.1016/j.smallrumres.2011.10.008]
32. Samir, H., Karen, A., Ashmawy, T., Abo-Ahmed, M., El-Sayed, M., & Watanabe, G. (2016). Monitoring of embryonic and fetal losses in different breeds of goats using real-time B-mode ultrasonography. Theriogenology, 85(2), 207-215. 10.1016/j.theriogenology.2015.09.039. [DOI:10.1016/j.theriogenology.2015.09.039]
33. Santos-Jimenez, Z., Guillen-Gargallo, S., Encinas, T., Berlinguer, F., Veliz-Deras, F. G., Martinez-Ros, P., & Gonzalez-Bulnes, A. (2020). Use of propylene-glycol as a cosolvent for GnRH in synchronization of estrus and ovulation in sheep. Animals, 10(5), 897. 10.3390/ani10050897. [DOI:10.3390/ani10050897]
34. Santos‐Jimenez, Z., Martinez‐Herrero, C., Encinas, T., Martinez‐Ros, P., & Gonzalez‐Bulnes, A. (2020). Comparative efficiency of oestrus synchronization in sheep with progesterone/eCG and progesterone/GnRH during breeding and non‐breeding season. Reproduction in Domestic Animals, 55(7), 882-884. 10.1111/rda.13698. [DOI:10.1111/rda.13698]
35. Shirodkar, S., Hutchinson, R. L., Perry, D. L., White, J. L., & Hem, S. L. (1990). Aluminum compounds used as adjuvants in vaccines. Pharmaceutical research, 7, 1282-1288. 10.1023/A:1015994006859. [DOI:10.1023/A:1015994006859]
36. Tríbulo, A., Rogan, D., Tríbulo, H., Tríbulo, R., Mapletoft, R. J., & Bó, G. A. (2012). Superovulation of beef cattle with a split-single intramuscular administration of Folltropin-V in two concentrations of hyaluronan. Theriogenology, 77(8), 1679-1685. 10.1016/j.theriogenology.2011.12.013. [DOI:10.1016/j.theriogenology.2011.12.013]
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
