دوره 11، شماره 30 - ( زمستان 1399 )                   جلد 11 شماره 30 صفحات 11-19 | برگشت به فهرست نسخه ها

XML English Abstract Print


Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:

moradi H, mohammadi sang cheshme A, sharifi S D, Hosseinzadeh S, SeyedJafari E, Salehi A. Ursolic Acid Improve Skeletal Muscle Hypertrophy by Increasing of PAX7, Myod and Myogenin Expression and Satellite Cells Proliferation in Native Broiler Chickens. rap. 2020; 11 (30) :11-19
URL: http://rap.sanru.ac.ir/article-1-1105-fa.html
مرادی هنگامه، محمدی سنگ چشمه عبدالله، شریفی سید داوود، حسین زاده سیم زر، سید جعفری احسان، صالحی عبدالرضا. تأثیر اورسولیک اسید بر بیان ژن های PAX-7، MyoD و میوژنین و تکثیر سلول های ماهواره ای در جوجه های بومی. پژوهشهاي توليدات دامي. 1399; 11 (30) :11-19

URL: http://rap.sanru.ac.ir/article-1-1105-fa.html


پردیس ابوریحان دانشگاه تهران، گروه علوم دام و طیور
چکیده:   (416 مشاهده)
   اورسولیک اسید (UA) به عنوان یک تری­ترپن پنج حلقه­ ای شناخته می­ شود که در بعضی از گیاهان دارویی همچون مرزه و آویشن کوهی وجود دارد و روی توسعه عضلات اثر می­ گذارد. در مطالعه اخیر، تأثیر اورسولیک اسید بر روی سلول­های C2C12 و همچنین سلول­های ماهواره­ای(SCs)  جدا شده از جوجه­ های گوشتی بومی مورد بررسی قرار گرفت. ابتدا در آزمایش In vitro، سلول­ های C2C12 از مرکز تحقیقات بنیاخته تهیه شدند و سلول­ های ماهواره­ای از جوجه­ های یک روزه جداسازی و خالص­ سازی شدند، در نهایت تحت تأثیر اورسولیک اسید قرار گرفتند. در آزمایش In vivo، اورسولیک اسید بر اساس وزن بدن به صورت داخل عضلانی در شش روز اول در دو نوبت به جوجه­ ها تزریق شد، بطوریکه دوزهای مورد استفاده بر اساس دوزهای بدست ­آمده از آزمایش In vitro بود. سلول­ های ماهواره­ای در روز هفتم از عضله پکتورال جوجه ­های تیمار ­شده جداسازی شدند. تشخیص SCs از طریق بیان ژن PAX-7 در آزمایشات In vitro و In vivo  تأیید شد. در واقع، سلول­ های ماهواره­ای و C2C12 در محیط کشت با اورسولیک اسید (0/00025، /0005، 0/001، 0/0015 و 0/002 میلی­ گرم در میلی­ لیتر) همراه با 1 سی­سی  DMSO کشت شدند. نتایج بدست ­آمده از هر دو آزمایشات In vitro و In vivo نشان داد که اورسولیک در غلظت 0/00025 میلی­ گرم بر میلی­ لیتر بطور معنی­­ داری بیان ژن­های درگیر در تکثیر و تمایز سلول­های ماهواره ای یعنی PAX-7، MyoD و میوژنین را افزایش داد و همچنین هایپرتروفی عضله را بهبود ­بخشید. در نتیجه، اورسولیک اسید می ­تواند به عنوان یک ماده مؤثر در کاهش دوره پرورش و افزایش سرعت رشد عضله اسکلتی در جوجه ­های گوشتی بومی پیشنهاد شود.
متن کامل [PDF 678 kb]   (128 دریافت)    
نوع مطالعه: كاربردي | موضوع مقاله: تغذیه طیور
دریافت: 1399/1/25 | ویرایش نهایی: 1399/12/19 | پذیرش: 1399/3/27 | انتشار: 1399/12/19

فهرست منابع
1. Alison, D., B. Jason, C. Foster and R. McGuigan. 2006. Using session RPE to monitor different methods of resistance exercise. Sports Science and Medicine, 5(2): 289-295.
2. Bakhtiari, N. 2016. Ursolic acid induces neomyogenesis through hyperplasia and increasing of satellite cells number in mice skeletal muscle. Journal of Stem Cell and Regenerative Biology, https://doi.org/10.15436/2471-0598.16.015 [DOI:10.15436/2471-0598.16.015.]
3. Bakhtiari, N., M. Soulemani, M. Javan, R. Hemmati and S. Hosseinkhani. 2015. Ursolic acid induces myoglobin expression and skeletal muscle remodeling in mice. Physiology and Pharmacology, 18(4): 373-382.
4. Bakhtiari, N., S. Mirzaie, R. Hemmati, E. Moslemee-Jalalvand, A.R. Noori and J. Kazemi. 2018. Mounting evidence validates Ursolic Acid directly activates SIRT1: A powerful STAC which mimic endogenous activator of SIRT1. Arch Biochem Biophys, 650: 39-48. [DOI:10.1016/j.abb.2018.05.012]
5. Beekman, L., T. Tohver and R. Leguillette. 2012. Comparison of cytokine mRNA expression in the bronchoalveolar lavage fluid of horses with inflammatory airway disease and bronchoalveolar lavage mastocytosis or neutrophilia using REST software analysis. Journal of Veterinary Internal Medicine, 26(1): 153-161. [DOI:10.1111/j.1939-1676.2011.00847.x]
6. Cameron-Smith, D. 2002. Exercise and skeletal muscle gene expression. Clinical and Experimental Pharmacology and Physiology, 29(3): 209-13. [DOI:10.1046/j.1440-1681.2002.03621.x]
7. Chu, X., X. He, Z. Shi, C. Li, F. Guo, S. Li, Y. Li, L. Na and C. Sun. 2015. Ursolic acid increases energy expenditure through enhancing free fatty acid uptake and β-oxidation via an UCP3/AMPK-dependent pathway in skeletal muscle. Molecular Nutrition & Food Research, 59(8): 1491-503. [DOI:10.1002/mnfr.201400670]
8. Dhawan, J. and T.A. Rando 2005. Stem cells in postnatal myogenesis: molecular mechanisms of satellite cell quiescence, activation and replenishment. Trends Cell Biol, 15(12): 666-73. [DOI:10.1016/j.tcb.2005.10.007]
9. Fulco, M., R.L. Schiltz, S. Iezzi, M.T. King, P. Zhao, Y. Kashiwaya, E. Hoffman, R.L. Veech and V. Sartorelli. 2003. Sir2 regulates skeletal muscle differentiation as a potential sensor of the redox state. Molecular Cell, 12(1): 51-62. [DOI:10.1016/S1097-2765(03)00226-0]
10. Garcia, V.P., F. Catala-Gregori, M.D. Hernandez, A. Megras and J. Madrid. 2006. Effect of formic acid and plant extracts on growth, nutrient digestibility, intestine mucosa morphology, and meat yield of broilers. Journal of Applied Poultry Research, 16: 555-562. [DOI:10.3382/japr.2006-00116]
11. Halevy, O.A., M. Geyram, Z. Barakm and D. Sklan. 2000. Early post hatch starvation decreases satellite cell proliferation and skeletal muscle growth in chicks, Journal of Nutrition, 130: 858-864. [DOI:10.1093/jn/130.4.858]
12. Hall, I.R., A. Tomann and U. Bauermann. 2008. Effect of a graded supplementation of savory in broiler feed on growth and carcass traits. Archive for Geflugelk, 72(3): 129-135.
13. Hawke, T.J. and D.J. Garry. 2001. Myogenic satellite cells: physiology to molecular biology. Journal of Applied Physiology, 91(2): 534-551. [DOI:10.1152/jappl.2001.91.2.534]
14. Jeong, J.W., J.J. Shim and I.D. Choi. 2015. Apple pomace extract improves endurance in exercise performance by increasing strength and weight of skeletal muscle. Journal of Medicinal Food, 18: 1380-1386. [DOI:10.1089/jmf.2014.3401]
15. Katashima, C.K., V.R. Silva, T.L. Gomes, C. Pichard and G.D. Pimentel. 2017. Ursolic acid and mechanisms of actions on adipose and muscle tissue: a systematic review. Obesity Reviews, 18(6): 700-711. [DOI:10.1111/obr.12523]
16. Kunkel, S.D., M. Suneja and S.M. Ebert. 2011. mRNA expression signatures of human skeletal muscle atrophy identifies a natural compound that increases muscle mass. Cell Metab, 13: 627-638. [DOI:10.1016/j.cmet.2011.03.020]
17. Kunwar, A., S. Jayakumar, H.N. Bhilwade, P.P. Bag, H. Bhatt, R.C. Chaubey, K.I. Priyadarsini. 2016. Protective effects of selenocystine against gamma-radiation-induced genotoxicity in Swiss albino mice, Radiat. Environ. Biophys, 50(2): 271-280. [DOI:10.1007/s00411-011-0352-2]
18. Lepper, C. and C.M. Fan. 2010. Inducible lineage tracing of Pax7‐descendant cells reveals embryonic origin of adult satellite cells. Genesis, 48: 424-436 [DOI:10.1002/dvg.20630]
19. Li, S., X. Liao, F. Meng, Y. Wang, Z. Sun, F. Guo, X. Li, M. Meng, Y. Li and C. Sun. 2014. Therapeutic role of ursolic acid on ameliorating hepatic steatosis and improving metabolic disorders in high-fat diet-induced non-alcoholic fatty liver disease rats. PLoS One, 9: e86724. [DOI:10.1371/journal.pone.0086724]
20. Meadows, E., J. Cho, J.M. Flynn and W.H. Klein. 2008. Myogenin regulates a distinct genetic program in adult muscle stem cells. Developmental Biology, 322: 406-414. [DOI:10.1016/j.ydbio.2008.07.024]
21. Moss, F.P. and C.P. Leblond. 1971. Satellite cells as the source of nuclei in muscles of growing rats, Anatomical Record, 170: 421-435. [DOI:10.1002/ar.1091700405]
22. Nakatsuka, R., T. Nozaki, Y. Uemura, Y. Matsuoka, Y. Sasaki, M. Shinohara, K. Ohura and Y. Sonoda. 2010. 5-Aza-2'-deoxycytidine treatment induces skeletal myogenic differentiation of mouse dental pulp stem cells. Archives of Oral Biology, 55: 350-357. [DOI:10.1016/j.archoralbio.2010.03.003]
23. Nkukwana, T.T. 2018. Global poultry production: Current impact and future outlook on the South African poultry industry. South African Journal of Animal Science, http://dx.doi.org/10.4314/sajas.v48i5.7. [DOI:10.4314/sajas.v48i5.7]
24. Nuredin, B. 2015. Ursolic acid induces myoglobin expression and skeletal muscle remodeling in mice. Physiology and Pharmacology, 18(4): 373-382.
25. Rahimi, S.Z., M.A. Teymouri-Zadeh, R. Karimi-Torshizi, A. Omidbaigi and H. Rokni. 2011. Effect of the three herbal extracts on growth performance, immune system, blood factors and intestinal selected bacterial population in broiler chickens. Journal of Agriculture Science Technology, 13: 527-539.
26. Sumariwalla, V.M. and W.H. Klein. 2001. Similar myogenic functions for myogenin and MRF4 but not MyoD in differentiated murine embryonic stem cells. Genesis, 30: 239-249. [DOI:10.1002/gene.1070]
27. Tapscott, S.J. 2005. The circuitry of a master switch: Myod and the regulation of skeletal muscle gene transcription. Development, 132: 2685-2695. [DOI:10.1242/dev.01874]
28. Velleman, S.G., K.E. Nestor, C.S. Coy and N.B. Anthony. 2010. Effect of posthatch feed restriction on broiler breast muscle development and muscle transcriptional regulatory factor gene and heparan sulfate proteoglycan expression, Int. Journal of Poultri Science, 9: 417-425. [DOI:10.3923/ijps.2010.417.425]
29. Wu, H., R. Yu, L. Shuo, W. Wei, Y. Jianlong, G. Xudong, L. Dongjun and C. Ming. 2012. In vitro culture and induced differentiation of sheep skeletal muscle satellite cells. Cell Biology International, 36: 579-587. [DOI:10.1042/CBI20110487]
30. Zamani, A.K., A.R. Ghannadi, A. Gafarian and B. Shojadoost. 2010. The effect of Satureja hortensis on performance of broiler chickens and NDHI titers, 16th European Symposium on Poultry Nutrition, 87-89.

ارسال نظر درباره این مقاله : نام کاربری یا پست الکترونیک شما:
CAPTCHA

ارسال پیام به نویسنده مسئول


کلیه حقوق این وب سایت متعلق به پژوهشهای تولیدات دامی می باشد.

طراحی و برنامه نویسی : یکتاوب افزار شرق

© 2021 CC BY-NC 4.0 | Research On Animal Production(Scientific and Research)

Designed & Developed by : Yektaweb