دوره 15، شماره 2 - ( تابستان 1403 )                   جلد 15 شماره 2 صفحات 79-69 | برگشت به فهرست نسخه ها


XML English Abstract Print


Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:

Bolooki Z, Jafarzadeh Shirazi M R, Kafi M, Kargar S, Boostani A. (2024). The Difference of the Rumen Microbial Population in Cyclic and Acyclic Grey Shirazi Ewes. Res Anim Prod. 15(2), 69-79. doi:10.61186/rap.15.2.69
URL: http://rap.sanru.ac.ir/article-1-1400-fa.html
بلوکی زهرا، جعفرزاده شیرازی محمدرضا، کافی مجتبی، کارگر شهریار، بوستانی علی داد. بررسی تفاوت جمعیت میکروبی شکمبه در میش‌های سیکلیک و آسیکلیک کبوده شیرازی پژوهشهاي توليدات دامي 1403; 15 (2) :79-69 10.61186/rap.15.2.69

URL: http://rap.sanru.ac.ir/article-1-1400-fa.html


1- بخش علوم دامی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه شیراز، شیراز، ایران و بخش علوم دامی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه شیراز، شیراز، ایران
2- بخش علوم دامی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه شیراز، شیراز، ایران & بخش علوم دامی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه شیراز، شیراز، ایران
3- بخش تولیدمثل و مامایی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شیراز، شیراز، ایران و دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شیراز، شیراز، ایران
4- مرکز تحقیقات و منابع طبیعی استان فارس، شیراز، ایران و مرکز تحقیقات و منابع طبیعی استان فارس، شیراز، ایران
چکیده:   (539 مشاهده)
چکیده مبسوط
مقدمه و هدف:  تا به حال تغییرات جمعیت میکروبی واژن در چرخه فحلی در چندین گونه از گونه­ های دامی ‌مانند گوسفند ارزیابی شده است. اما تغییرات جمعیت میکروبی شکمبه در طی دوره‌ی فحلی در گوسفندان مورد بررسی قرار نگرفته است. در مطالعه­ ای نتایج نشان داد اختلاف‌های جمعیت میکروبی شکمبه در دو فصل تولیدمثلی، به‎ دلیل تفاوت‌های ناشی از واکنش به طول روز بوده و تغذیه اثر چندانی بر آن نداشته است. این احتمال وجود دارد که در فصول تولیدمثلی و خارج تولیدمثلی حیوان دارای جمعیت میکروبی متفاوتی در دستگاه گوارش باشد و از آن جا که شواهد موجود از پژوهش‌ها بالینی در جانداران نشان می‌دهد، میکروب‌های سیستم گوارشی می‌توانند فعالیت مغز و رفتار را از طریق مسیرهای هورمونی و عصبی تغییر دهند. بنابراین، در این مطالعه هدف اصلی بررسی تغییرات جمعیت میکروبی شکمبه در فصل تولیدمثلی در دوره‌ی فحلی در میش‌هایی که بروز فحلی دارند و میش‌هایی که به هر علتی آن را نشان نمی‌دهند یا به اصطلاح انستروس هستند. تغییرات جمعیت میکروبی شکمبه  فصل تولیدمثلی در دوره‌ی فحلی برای دام‌هایی که بروز فحلی داشتند و دام‌هایی که این صفت را نشان نمی‌دهند یا انستروس بودند سنجش شد.
مواد و روش‌ها: این پژوهش هم زمان با شروع فصل غیرتولیدمثلی (اواخر بهار- آغاز تیر ماه) انجام شد؛ میش­ ها نژاد کبوده شیراز (2-3 ساله) بود. جهت  بررسی تغییرات جمعیت میکروبی مایع شکمبه  دو گروه 10 راسی از دام‌های استروس و انستروس  با کمک دام نر فحل یاب تشکیل شد و هر چهار روز یک بار  (5 زمان) نمونه مایع شکمبه جهت کشت میکروبی و سایر بررسی‌ها در هر دو گروه جمع‌آوری شد. برای کشت و تفریق کلنی‌ها، ابتدا از محیط‌کشت عمومی‌ و دارای رشد متفاوت برای کلنی باکتریوم‌های بی‌هوازی مانند  پلیت کانت آگار (Plate count agarMRS آگار (de Man-Rogosa - Sharpe) و نشاسته آگار (Starch agar) استفاده شد و برای تفریق کلنی‌ها نیز محیط‌کشت‌های تفریقی یا واکاوی‌های تشخیصی مختلف جهت شناسایی کلنی‌ها انجام گرفت. به کمک نرم افزار  SASنسخه 9/1، واکاوی داده‌ها انجام شد. میانگین‌ها با رویه کمینه مربعات و تصحیح برای آزمون توکی مقایسه شدند.
یافته‌ها: با توجه به نتایج حاصل از مطالعه حاضر، تفاوت جمعیت بررسی شده در بین دو گروه در 5 زمان مختلف نشان داد که جمعیت باکتری‌های تولیدکننده اسیدلاکتیک در روز فحلی مقدار بالاتر و تفاوت معنی‌داری را با سایر زمان‌ها در مقایسه با گروه انستروس نشان دادند.  باکتری‌ها لیپولاتیک در روز فحلی نسبت به تمامی‌ روزها در هر دو گروه بالاتر بوده و دارای تفاوت معنی‌دار نیز هست. مقایسه گروه­ های‌های مختلف نشان داد که زمان‌های 1 تا 5 گروه استروس در فصل تولیدمثلی بیش‌ترین تعداد را نسبت به سایر گروه‌ها در زمان‌ها مختلف مطالعه دارد (0/05>p). گروه‌های انستروس نیز در تمامی زمان‌ها کم‌ترین تعداد را داشتند (0/05>p). مقایسه دو گروه استروس و انستروس در دو گروه نشان داد که روزهای فحلی و نهم دارای مقادیر بالاتری نسبت به سایر زمان‌ها هستند. در مقایسه میانگین تعداد جمعیت کلنی‌های لیپولایتیک در گروه استروس، بیش‌ترین تعداد مربوط به زمان اول و کم‌ترین آن مربوط به زمان 4 بود که تفاوت معنی‌دار با سایر زمان‌ها داشتند (0/05>p). جمعیت باکتریهای پروتئولایتیک، در زمان 1 بیش‌ترین تعداد باکتری‌های را داشت و به‌ترتیب زمان‌های 2، 5، 3 و 4 مقادیر بعدی را در مقایسه گروه استروس در 5 زمان نشان داد (0/05>p)؛ زمان 5 با زمان‌های 2 و 3 تفاوت معنی‌دار نداشت (0/05<p). گروه استروس در این فصل در زمان 1، بیش‌ترین و کم‌ترین در زمان 4 بود (0/05>p). زمان‌های 3 تا 5 با یکدیگر اختلاف معنی‌دار نداشتند (0/05<p) در گروه انستروس زمان 3 و 1 بیش‌ترین تعداد و زمان 2 و 5 کم‌ترین تعداد را داشتند (0/05>p). مقایسه میانگین جمعیت حاصل از شمارش کلنی­ های کل باکتری ­ها نشان داد، در بررسی گروه‌های مختلف، گروه استروس در هر 5 زمان بیش‌ترین تعداد از میانگین جمعیت میکروبی را داشت (0/05>p). کم‌ترین تعداد مربوط به دو گروه انستروس بود (0/05>p). تفاوت جمعیت بررسی شده در بین دو گروه در 5 زمان مختلف نشان داد که تنها در روز فحلی جمعیت باکتری‌های تولیدکننده اسیدلاکتیک مقدار بالاتر و تفاوت معنی­داری را در مقایسه با گروه انستروس دارند. جمعیت باکتری‌های لیپولایتیک در دو گروه استروس و انستروس در 5 زمان مورد مطالعه نشان داد، گروه استروس در 4 زمان یعنی روز فحلی و زمانهای 5، 6 و 17 مقدار بالاتر و معنی‌داری نسبت به گروه انستروس دارد. نتایج نشان داد در تمامی زمان‌ها مقدار جمعیت باکتری کل در گروه استروس شمار بیشتری داشت و این تفاوت  معنادار بود. همچنین نتایج نشان داد، باکتری‌های بی‌هوازی در روزهای خاصی از فحلی (روز اول تا نهم) دارای افزایش شایان توجهی نسبت به گروه انستروس داشتند.
نتیجه‌گیری: به‎ طور کلی نتیجه این پژوهش نشان داد، جمعیت کلنی‌ باکتری‌های آمیلولیتیکی، لیپولیتیکی و کل کلنی‌های حاصل از باکتری‌های بی‌هوازی دارای تفاوت معنی‌داری در  روزهای چرخه استروس هستند  که ممکن است میتوانند بر تولیدمثل اثرگذار باشند. بر این اساس، بهتر است در مطالعات پیش‌رو با افزایش آنالیزها مانند تغییرات هورمونی و بررسی ­های ملکولی همراه با کشت میکروبی در دروه فحلی نتایج قابل درک‌تری از اثر میکروبی شکمبه بر فحلی در میش ارائه داد.

 
واژه‌های کلیدی: تولیدمثل، شکمبه، کبوده شیرازی، میکروب
متن کامل [PDF 640 kb]   (108 دریافت)    
نوع مطالعه: پژوهشي | موضوع مقاله: فیزیولوژی
دریافت: 1402/4/20 | پذیرش: 1402/7/21

فهرست منابع
1. llden, W. (1968). Undernutrition of the Merino sheep and its sequelae. III. The effect on lifetime productivity of growth restrictions imposed at two stages of early post-natal life in a Mediterranean environment. Australian Journal of Agricultural Research, 19(6), 981-996. [DOI:10.1071/AR9680981]
2. Allden, W. (1970). The effects of nutritional deprivation on the subsequent productivity of sheep and cattle. Nutrition Abstracts and Reviews,
3. Ault, T. B., Clemmons, B. A., Reese, S. T., Dantas, F. G., Franco, G. A., Smith, T. P., Edwards, J. L., Myer, P. R., & Pohler, K. G. (2019). Uterine and vaginal bacterial community diversity prior to artificial insemination between pregnant and nonpregnant postpartum cows. Journal of Animal Science, 97(10), 4298-4304. [DOI:10.1093/jas/skz210]
4. Cryan, J. F., & Dinan, T. G. (2012). Mind-altering microorganisms: the impact of the gut microbiota on brain and behaviour. Nature reviews neuroscience, 13(10), 701-712. [DOI:10.1038/nrn3346]
5. Deng, F., McClure, M., Rorie, R., Wang, X., Chai, J., Wei, X., Lai, S., & Zhao, J. (2019). The vaginal and fecal microbiomes are related to pregnancy status in beef heifers. Journal of Animal Science and Biotechnology, 10(1), 1-13. [DOI:10.1186/s40104-019-0401-2]
6. Dinan, T. G., & Cryan, J. F. (2013). Melancholic microbes: a link between gut microbiota and depression? Neurogastroenterology & Motility, 25(9), 713-719. [DOI:10.1111/nmo.12198]
7. Ghorbani, G. R., Morgavi, D. P., Beauchemin K. A., & Leedle, J. A. Z. (2002). Effects of bacterial direct-fed microbials on ruminal fermentation, blood variables, and the microbial populations of feedlot cattle. Journal of Animal Science, 80, 1977-1985 (In Persian). [DOI:10.2527/2002.8071977x]
8. Gu, X., Chen, J., Li, H., Song, Z., Chang, L., He, X., & Fan, Z. (2021). Isomaltooligosaccharide and Bacillus regulate the duration of farrowing and weaning-estrous interval in sows during the perinatal period by changing the gut microbiota of sows. Animal Nutrition, 7(1), 72-83. [DOI:10.1016/j.aninu.2020.06.010]
9. Hess, B., Lake, S., Scholljegerdes, E., Weston, T., Nayigihugu, V., Molle, J., & Moss, G. (2005). Nutritional controls of beef cow reproduction. Journal of Animal Science, 83(suppl_13), E90-E106. [DOI:10.2527/2005.8313_supplE90x]
10. Huang, J., Chen, P., Xiang, Y., Liang, Q., Wu, T., Liu, J., Zeng, Y., Zeng, H., Liang, X., & Zhou, C. (2022). Gut microbiota dysbiosis-derived macrophage pyroptosis causes polycystic ovary syndrome via steroidogenesis disturbance and apoptosis of granulosa cells. International Immunopharmacology, 107, 108717. [DOI:10.1016/j.intimp.2022.108717]
11. Laguardia-Nascimento, M., Branco, K. M. G. R., Gasparini, M. R., Giannattasio-Ferraz, S., Leite, L. R., Araujo, F. M. G., Salim, A. C. d. M., Nicoli, J. R., De Oliveira, G. C., & Barbosa-Stancioli, E. F. (2015). Vaginal microbiome characterization of Nellore cattle using metagenomic analysis. PLoS One, 10(11), e0143294. [DOI:10.1371/journal.pone.0143294]
12. McEwan, N. R., Abecia, L., Regensbogenova, M., Adam, C. L., Findlay, P., & Newbold, C. J. (2005). Rumen microbial population dynamics in response to photoperiod. Letters in Applied Microbiology, 41(1), 97-101. [DOI:10.1111/j.1472-765X.2005.01707.x]
13. Mishra, A. K., Kumar, S. S., & Ghosh, A. R. (2019). Probiotic Enterococcus faecalis AG5 effectively assimilates cholesterol and produces fatty acids including propionate. FEMS microbiology letters, 366(4), fnz039. [DOI:10.1093/femsle/fnz039]
14. Mohajeri, M. H., La Fata, G., Steinert, R. E., & Weber, P. (2018). Relationship between the gut microbiome and brain function. Nutrition reviews, 76(7), 481-496. [DOI:10.1093/nutrit/nuy009]
15. Mousavi, M. A. S. (2011). The effect of using melatonin along with progestogens on the fertility indices of ewe in the non-breeding season. Iran Animal Science Research, 3(1), 88-94 (In Persian).
16. Omar, A. E., Gharib, H. S., & Said, E. N. (2019). Effect of feeding different concentrate roughage ratio on growth, reproductive performance and behavior of sheep. Slovenian Veterinary Research, 56(Suppl 22), 433-443. [DOI:10.26873/SVR-781-2019]
17. Rekwot, P., Ogwu, D., Oyedipe, E., & Sekoni, V. (2001). The role of pheromones and biostimulation in animal reproduction. Animal reproduction science, 65(3-4), 157-170. [DOI:10.1016/S0378-4320(00)00223-2]
18. Santos, T. M., & Bicalho, R. C. (2012). Diversity and succession of bacterial communities in the uterine fluid of postpartum metritic, endometritic and healthy dairy cows. PLoS One, 7(12), e53048. [DOI:10.1371/journal.pone.0053048]
19. Senger, P., & TO, P. (2012). Pathways to pregnancy and parturition 3rd edition. Redmond OR: Current Conceptions.
20. Seo, J. K., Kim, S.-W., Kim, M. H., Upadhaya, S. D., Kam, D. K., & Ha, J. K. (2010). Direct-fed microbials for ruminant animals. Asian-Australasian Journal of Animal Sciences, 23(12), 1657-1667. [DOI:10.5713/ajas.2010.r.08]
21. Skude, G., Mårdh, P., & Weström, L. (1976). Amylases of the genital tract: I. Isoamylases of genital tract tissue homogenates and peritoneal fluid. American Journal of Obstetrics and Gynecology, 126(6), 652-656. [DOI:10.1016/0002-9378(76)90513-5]
22. Stewart, R. (1986). Feeding lupins to ewes for four days during the luteal phase can increase ovulation rate. Anim Prod Aust, 16, 367-369.
23. Sun, P., Wang, J., & Deng, L. (2013). Effects of Bacillus subtilis natto on milk production, rumen fermentation and ruminal microbiome of dairy cows. animal, 7(2), 216-222. [DOI:10.1017/S1751731112001188]
24. Swartz, J. D., Lachman, M., Westveer, K., O'Neill, T., Geary, T., Kott, R. W., Berardinelli, J. G., Hatfield, P. G., Thomson, J. M., & Roberts, A. (2014). Characterization of the vaginal microbiota of ewes and cows reveals a unique microbiota with low levels of lactobacilli and near-neutral pH. Frontiers in veterinary science, 1, 19. [DOI:10.3389/fvets.2014.00019]
25. Wallace, J. G., Potts, R. H., Szamosi, J. C., Surette, M. G., & Sloboda, D. M. (2018). The murine female intestinal microbiota does not shift throughout the estrous cycle. PLoS One, 13(7), e0200729. [DOI:10.1371/journal.pone.0200729]
26. Wanapat, M., Nontaso, N., Yuangklang, C., Wora-Anu, S., Ngarmsang, A., Wachirapakorn, C., & Rowlinson, P. (2003). Comparative study between swamp buffalo and native cattle in feed digestibility and potential transfer of buffalo rumen digesta into cattle. Asian-Australasian Journal of Animal Sciences, 16(4), 504-510. [DOI:10.5713/ajas.2003.504]
27. Wang, Z., Fu, H., Zhou, Y., Yan, M., Chen, D., Yang, M., Xiao, S., Chen, C., & Huang, L. (2021). Identification of the gut microbiota biomarkers associated with heat cycle and failure to enter oestrus in gilts. Microbial Biotechnology, 14(4), 1316-1330. [DOI:10.1111/1751-7915.13695]
28. Wells, M., Pryor, O., Haggerty, D., Pickett, H., & Mickle, J. (1969). Effect of estrous cycle and lactation on lipase activity in bovine milk and blood. Journal of dairy science, 52(7), 1110-1113. [DOI:10.3168/jds.S0022-0302(69)86705-6]
29. Wu, D., Wang, C., Simujide, H., Liu, B., Chen, Z., Zhao, P., Huangfu, M., Liu, J., Gao, X., & Wu, Y. (2022). Reproductive Hormones Mediate Intestinal Microbiota Shifts during Estrus Synchronization in Grazing Simmental Cows. Animals, 12(14), 1751. [DOI:10.3390/ani12141751]
30. Yildirim, S., Yeoman, C. J., Janga, S. C., Thomas, S. M., Ho, M., Leigh, S. R., Consortium, P. M., White, B. A., Wilson, B. A., & Stumpf, R. M. (2014). Primate vaginal microbiomes exhibit species specificity without universal Lactobacillus dominance. The ISME journal, 8(12), 2431-2444. [DOI:10.1038/ismej.2014.90]

ارسال نظر درباره این مقاله : نام کاربری یا پست الکترونیک شما:
CAPTCHA

ارسال پیام به نویسنده مسئول


بازنشر اطلاعات
Creative Commons License این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است.

کلیه حقوق این وب سایت متعلق به پژوهشهای تولیدات دامی می باشد.

طراحی و برنامه نویسی : یکتاوب افزار شرق

© 2024 CC BY-NC 4.0 | Research On Animal Production

Designed & Developed by : Yektaweb