دوره 14، شماره 42 - ( زمستان 1402 )
جلد 14 شماره 42 صفحات 67-62 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Ahnadian F, Irani M, Mohammadi Sangcheshmeh A. (2023). Isolation, Identification and Cultivation of Mesenchymal Stem Cells Derived from Adipose Tissue of Laying Hens. Res Anim Prod. 14(42), 62-67. doi:10.61186/rap.14.42.62
URL: http://rap.sanru.ac.ir/article-1-1362-fa.html
URL: http://rap.sanru.ac.ir/article-1-1362-fa.html
احمدیان فرهنگ، ایرانی مهرداد، محمدی سنگ چشمه عبدالله. جداسازی، شناسایی و کشت سلولهای بنیادی مزانشیمی مشتق از بافت چربی مرغ تخمگذار پژوهشهاي توليدات دامي 1402; 14 (42) :67-62 10.61186/rap.14.42.62
1- گروه علوم دامی، دانشگاه آزاد اسلامی، واحد قائم شهر
2- گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، پردیس ابوریحان، دانشگاه تهران، ایران
2- گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، پردیس ابوریحان، دانشگاه تهران، ایران
چکیده: (931 مشاهده)
چکیده مبسوط
مقدمه و هدف: امروزه شدت و سرعت تولید در مرغان تخم گذار باعث بروز ناهنجاریهای متعدد از جمله مشکلات استخوانی و اسکلتی شده است که زیان اقتصادی سنگینی را بهدنبال دارد. انجام مطالعات روی سلولهای بنیادی استحصال شده از مرغان تخمگذار میتواند باعث بهبود شناخت و درک ما از مکانیسمهای تمایزی و مولکولی در سطح سلولی در این پرندگان شود. بههمین منظور هدف از این مطالعه، استحصال سلولهای بنیادی مزانشیمی از بافت چربی مرغان تخم گذار و کشت این سلولها در شرایط آزمایشگاهی بود.
مواد و روشها: در این تحقیق، سلولهای بنیادی مزانشیمی طی شرایط استریل در محیط آزمایشگاه از بافت چربی احشایی مرغان تخمگذار (سویۀ هایلاین w-36) جداسازی شد. سپس در شرایط محیط کشت استاندارد، سلولهای موردنظر بهوسیله تیمار با آنزیم کلاژناز از سایر سلولها جدا شده بود. سلولهای استحصال شده پس از چند بار سانتریفیوژ کردن و خالصسازی، در محیط کشت DMEM-F12 حاوی سرم جنین گاوی 10% کشت داده شد. در طول 21 روز، برای بررسی عملکرد سلولهای جدا شده و توانایی رشد و تکثیر سلولی، روند رشد سلولها و چگونگی تشکیل کلنی سلولی مورد ارزیابی قرار گرفت. سلولها تا 14 بار با مورفولوژی طبیعی پاساژ داده شدند. برای بررسی سرعت رشد سلولها این آزمون در پاساژهای 2، 4 و 8 تکرار شد تا کاهش توانایی رشد سلولها با افزایش سن، مورد بررسی قرار گیرد.
یافتهها: حدود 3 الی 4 روز بعد از کشت، سلولهای چسبیده 70-80 درصد فلاسک را پر کردند. میانگین روند رشد سلولها در پاساژهای 2، 4 و 8 به ترتیب برابر 37/03، 60/92 و 101/42 درصد که نشان دهنده ارتباط، توانایی تکثیر و خود نوسازی سلولهای بنیادی با سن آنها بود. بعد از گذشت 9 روز از کشت سلولی، تعداد کلنیهای تشکیل شده از سلولهای حاصل از پاساژهای 2 و 5 با غلظتهای 175، 350 و 520 سلول در هر سانتیمتر مربع پلیت 6 خانهای بهترتیب برابر با 22، 62 و 84 کلنی بود.
نتیجهگیری: نتایج این تحقیق نشان داد که سلولهای بنیادی مزانشیمی استحصال شده از بافت چربی مرغان تخمگذار، توانایی حفظ خصوصیات بنیادی خود در طی تقسیمات سلولی متعدد را دارند و میتوانند ساختار مورفولوژیکی و خصوصیات خاص خود از جمله عملکرد مربوط به رشد را حفظ نمایند.
مقدمه و هدف: امروزه شدت و سرعت تولید در مرغان تخم گذار باعث بروز ناهنجاریهای متعدد از جمله مشکلات استخوانی و اسکلتی شده است که زیان اقتصادی سنگینی را بهدنبال دارد. انجام مطالعات روی سلولهای بنیادی استحصال شده از مرغان تخمگذار میتواند باعث بهبود شناخت و درک ما از مکانیسمهای تمایزی و مولکولی در سطح سلولی در این پرندگان شود. بههمین منظور هدف از این مطالعه، استحصال سلولهای بنیادی مزانشیمی از بافت چربی مرغان تخم گذار و کشت این سلولها در شرایط آزمایشگاهی بود.
مواد و روشها: در این تحقیق، سلولهای بنیادی مزانشیمی طی شرایط استریل در محیط آزمایشگاه از بافت چربی احشایی مرغان تخمگذار (سویۀ هایلاین w-36) جداسازی شد. سپس در شرایط محیط کشت استاندارد، سلولهای موردنظر بهوسیله تیمار با آنزیم کلاژناز از سایر سلولها جدا شده بود. سلولهای استحصال شده پس از چند بار سانتریفیوژ کردن و خالصسازی، در محیط کشت DMEM-F12 حاوی سرم جنین گاوی 10% کشت داده شد. در طول 21 روز، برای بررسی عملکرد سلولهای جدا شده و توانایی رشد و تکثیر سلولی، روند رشد سلولها و چگونگی تشکیل کلنی سلولی مورد ارزیابی قرار گرفت. سلولها تا 14 بار با مورفولوژی طبیعی پاساژ داده شدند. برای بررسی سرعت رشد سلولها این آزمون در پاساژهای 2، 4 و 8 تکرار شد تا کاهش توانایی رشد سلولها با افزایش سن، مورد بررسی قرار گیرد.
یافتهها: حدود 3 الی 4 روز بعد از کشت، سلولهای چسبیده 70-80 درصد فلاسک را پر کردند. میانگین روند رشد سلولها در پاساژهای 2، 4 و 8 به ترتیب برابر 37/03، 60/92 و 101/42 درصد که نشان دهنده ارتباط، توانایی تکثیر و خود نوسازی سلولهای بنیادی با سن آنها بود. بعد از گذشت 9 روز از کشت سلولی، تعداد کلنیهای تشکیل شده از سلولهای حاصل از پاساژهای 2 و 5 با غلظتهای 175، 350 و 520 سلول در هر سانتیمتر مربع پلیت 6 خانهای بهترتیب برابر با 22، 62 و 84 کلنی بود.
نتیجهگیری: نتایج این تحقیق نشان داد که سلولهای بنیادی مزانشیمی استحصال شده از بافت چربی مرغان تخمگذار، توانایی حفظ خصوصیات بنیادی خود در طی تقسیمات سلولی متعدد را دارند و میتوانند ساختار مورفولوژیکی و خصوصیات خاص خود از جمله عملکرد مربوط به رشد را حفظ نمایند.
فهرست منابع
1. Aliborzi, G., Vahdati, A., Mehrabani, D., Hosseini, S. E., & Tamadon, A. (2016). Isolation, characterization and growth kinetic comparison of bone marrow and adipose tissue mesenchymal stem cells of Guinea pig. International journal of stem cells, 9(1), 15-123. [DOI:10.15283/ijsc.2016.9.1.115]
2. Ansari Pirsaraei, Z., Hatefi, A., Zare Shahneh, A., & Deldar, H. (2022). Evaluation of beta-adrenergic agonist theophylline function in reducing inflammation on blood metabolites and egg quality traits in laying hens at the end of production period. Research On Animal Production, 13(37), 114-121. [DOI:10.52547/rap.13.37.114]
3. Arjmandi, B. H., & Smith, B. J. (2002). Soy isoflavones' osteoprotective role in postmenopausal women: mechanism of action. The Journal of nutritional biochemistry, 13(3), 130-137. [DOI:10.1016/S0955-2863(02)00172-9]
4. Bai, C., Hou, L., Ma, Y., Chen, L., Zhang, M., & Guan, W. (2013). Isolation and characterization of mesenchymal stem cells from chicken bone marrow. Cell and tissue banking, 14(3), 437-451. [DOI:10.1007/s10561-012-9347-8]
5. Beck, M., & Hansen, K. (2004). Role of estrogen in avian osteoporosis. Poultry science, 83(2), 200-206. [DOI:10.1093/ps/83.2.200]
6. Braun, J., Hack, A., Weis-Klemm, M., Conrad, S., Treml, S., Kohler, K., . . . Aicher, W. K. (2010). Evaluation of the osteogenic and chondrogenic differentiation capacities of equine adipose tissue-derived mesenchymal stem cells. American journal of veterinary research, 71(10), 1228-1236. [DOI:10.2460/ajvr.71.10.1228]
7. Broumandania, Z., Khosravinia, H., Masourei, B., & Parizadian, B. (2022). Effect of vitamin D3 and guanidinoacetic acid on performance, some physiological parameters, carcass characteristics and behavior of broilers affected by lactic acidosis. Research On Animal Production (Scientific and Research), 13(37), 10-21. [DOI:10.52547/rap.13.37.10]
8. Ertaş, G., Ural, E., Ural, D., Aksoy, A., Kozdağ, G., Gacar, G., & Karaöz, E. (2012). Comparative analysis of apoptotic resistance of mesenchymal stem cells isolated from human bone marrow and adipose tissue. The Scientific World Journal, 2012. [DOI:10.1100/2012/105698]
9. Francis, M. P., Sachs, P. C., Elmore, L. W., & Holt, S. E. (2010). Isolating adipose-derived mesenchymal stem cells from lipoaspirate blood and saline fraction. Organogenesis, 6(1), 11-14. [DOI:10.4161/org.6.1.10019]
10. Greendale, G. A., FitzGerald, G., Huang, M.-H., Sternfeld, B., Gold, E., Seeman, T., . . . Sowers, M. (2002). Dietary soy isoflavones and bone mineral density: results from the study of women's health across the nation. American journal of epidemiology, 155(8), 746-754. [DOI:10.1093/aje/155.8.746]
11. Hinenoya, H., Katsuyama, H., & Nohno, T. (2013). Genistein affects osteoblastic MC3T3-E1 cells both through estrogen receptor and BMP-Smad signaling pathways. Kawasaki Med J, 39, 21-31.
12. Khatri, M., O'Brien, T. D., & Sharma, J. M. (2009). Isolation and differentiation of chicken mesenchymal stem cells from bone marrow. Stem cells and development, 18(10), 1485-1492. [DOI:10.1089/scd.2008.0223]
13. Kim, C. Y., Le, T. T., Chen, C., Cheng, J.-X., & Kim, K.-H. (2011). Curcumin inhibits adipocyte differentiation through modulation of mitotic clonal expansion. The Journal of nutritional biochemistry, 22(10), 910-920. [DOI:10.1016/j.jnutbio.2010.08.003]
14. Kingham, P. J., Kalbermatten, D. F., Mahay, D., Armstrong, S. J., Wiberg, M., & Terenghi, G. (2007). Adipose-derived stem cells differentiate into a Schwann cell phenotype and promote neurite outgrowth in vitro. Experimental neurology, 207(2), 267-274. [DOI:10.1016/j.expneurol.2007.06.029]
15. Ko, K.-P. (2014). Isoflavones: chemistry, analysis, functions and effects on health and cancer. Asian Pacific Journal of Cancer Prevention, 15(17), 7001-7010. [DOI:10.7314/APJCP.2014.15.17.7001]
16. Pourreza J, S. G., and Mehri. (2005). Scott's Nutrition of the Chicken (4th ed.). Arkan Publications.
17. Vallée, M., Côté, J.-F., & Fradette, J. (2009). Adipose-tissue engineering: taking advantage of the properties of human adipose-derived stem/stromal cells. Pathologie Biologie, 57(4), 309-317. [DOI:10.1016/j.patbio.2008.04.010]
18. Whitehead, C. C. (2004). Overview of bone biology in the egg-laying hen. Poultry science, 83(2), 193-199. [DOI:10.1093/ps/83.2.193]
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
