دوره 13، شماره 35 - ( بهار 1401 )
جلد 13 شماره 35 صفحات 108-100 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Nazari M, Daghigh Kia H, Najafi A. (2022). The Effect of using Different Levels of Luteolin on Reducing Malondialdehyde Content and Increasing the Motility and Viability of Ross 308 Rooster Sperm during Cryopreservation and Thawing Process. Res Anim Prod. 13(35), 100-108. doi:10.52547/rap.13.35.100
URL: http://rap.sanru.ac.ir/article-1-1211-fa.html
URL: http://rap.sanru.ac.ir/article-1-1211-fa.html
نظری مهدی، دقیق کیا حسین، نجفی ابوذر. اثر استفاده از سطوح مخلتف لوتئولین بر کاهش میزان مالون‌دی‌آلدهید و افزایش تحرک و زنده‌مانی اسپرم خروس راس 308 طی فرایند انجماد و یخ گشایی پژوهشهاي توليدات دامي 1401; 13 (35) :108-100 10.52547/rap.13.35.100
مهدی نظری1، حسین دقیق کیا*1، ابوذر نجفی2
1- گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه تبریز
2- گروه علوم دام و طیور، پردیس ابوریحان، دانشگاه تهران
2- گروه علوم دام و طیور، پردیس ابوریحان، دانشگاه تهران
چکیده: (2711 مشاهده)
چکیده مبسوط
مقدمه و هدف: استرس اکسیداتیو یک عامل مهم در عملکرد ضعیف اسپرم است که باعث تغییرات مورفولوژیکی، و آسیب اکسیداتیو می‌شود، پژوهشهای مختلف نشان داده‌اند آنتی‌اکسیدان‌ها میتوانند تا حدودی از آسیب‌های اکسیداتیو طی انجماد بکاهند. درواقع آنتی‌اکسیدان‌ها باعث کاهش، حذف و غیر فعال‌سازی رادیکال‌های آزاد می‌شوند، بسیاری از ترکیبات نظیر برخی از عصاره‌های گیاهی، برخی مواد شیمیایی صنعتی و برخی از اسیدهای آمینه میتوانند به‌عنوان آنتی‌اکسیدان فعالیت کرده و رادیکال‌های آزاد را در محیط خنثی کنند لوتئولین عضو مهمی از خانواده فلاونوئیدها است و به‌صورت گلیکوزیله در گیاهان وجود دارد و بر اساس مطالعات مشخص شده که لوتئولین دارای خواص آنتی‌اکسیدانی است. هدف از مطالعه حاضر کاهش میزان پراکسیداسیون لیپید و به حداقل رساندن تنش اکسیداتیو با افزودن سطوح مختلف لوتئولین در محیط انجمادی است.
مواد و روش‌ها: نمونه‌های منی از 15 قطعه خروس در سن 28 هفتگی جمع‌آوری شدند. اسپرم گیری از خروس ها به روش مالش پشتی-شکمی انجام گرفت. برای از بین بردن اثرات فردی پس از ارزیابی های اولیه، نمونه‌ها با هم مخلوط شدند و جهت اعمال برنامه های انجمادی مورد استفاده قرار گرفتند. پس از رقیق‌سازی نمونه‌ها و افزودن سطوح صفر (شاهد)، 0/25، 0/5، 0/75، 1 و 1/25 میکرومولار لوتئولین، به رقیق کنندهی پایه (لیک) اسپرم‌ها به نسبت 1:20 افزوده شدند. نمونه‌های مورد آزمایش در دمای °C4 سردسازی شده و سپس در داخل ازت مایع منجمد گردیدند. یخ گشایی نمونه‌ها در دمای 37 درجه سانتی‌گراد انجام گرفت و سپس فراسنجه‌های تحرک بوسیله سیستم کامپیوتری کاسا، زنده‌مانی با تست ایوزین نیگروزین، یکپارچگی غشای پلاسمایی با تست هاست، ریخت‌شناسی بوسیله تست هانکوک و میزان مالون‌دی‌آلدهید تولید شده اندازه گیری شد و سپس داده‌های حاصل در قالب طرح کاملا تصادفی آنالیز شد.
یافته‌ها: نتایج به دست آمده نشان داد که افزودن سطوح 0/75 ، 1 و 1/25 میکرومول سبب افزایش معنی‌داری در تحرک کل و سطوح 0/75 و 1 باعث افزایش تحرک پیش‌رونده و VAP شد. علاوه بر این سطح 1 میکرومول لوتئولین سبب افزایش معنی‌داری در فراسنجهVSL شد (0/05 >P). نتایج نشان داد که سطوح 0/75 و 1 میکرومول باعث افزایش معنی‌داری در زنده‌مانی و سلامت غشا شد و همچنین سطح 0/75 میکرومول لوتئولین باعث شد میزان مالون‌دی‌آلدهید و درصد اسپرم‌هایی با ریخت‌شناسی غیرطبیعی کاهش پیدا کند (0/05 >P).
نتیجه‌گیری: نتایج این پژوهش نشان داد که افزودن لوتئولین در رقیق‌کننده طی انجماد و یخ گشایی می‌تواند تأثیر مثبتی در بهبود کیفیت اسپرم خروس داشته باشد و متعاقبا سبب افزایش تحرک کل و پیش‌رونده بعد از انجماد و یخ‌گشایی گردد و همینطور سطح 0/75 میکرومولار توانست بهترین عملکرد را در بین سطوح مختلف افزوده شده در رقیق کننده داشته باشد.
مقدمه و هدف: استرس اکسیداتیو یک عامل مهم در عملکرد ضعیف اسپرم است که باعث تغییرات مورفولوژیکی، و آسیب اکسیداتیو می‌شود، پژوهشهای مختلف نشان داده‌اند آنتی‌اکسیدان‌ها میتوانند تا حدودی از آسیب‌های اکسیداتیو طی انجماد بکاهند. درواقع آنتی‌اکسیدان‌ها باعث کاهش، حذف و غیر فعال‌سازی رادیکال‌های آزاد می‌شوند، بسیاری از ترکیبات نظیر برخی از عصاره‌های گیاهی، برخی مواد شیمیایی صنعتی و برخی از اسیدهای آمینه میتوانند به‌عنوان آنتی‌اکسیدان فعالیت کرده و رادیکال‌های آزاد را در محیط خنثی کنند لوتئولین عضو مهمی از خانواده فلاونوئیدها است و به‌صورت گلیکوزیله در گیاهان وجود دارد و بر اساس مطالعات مشخص شده که لوتئولین دارای خواص آنتی‌اکسیدانی است. هدف از مطالعه حاضر کاهش میزان پراکسیداسیون لیپید و به حداقل رساندن تنش اکسیداتیو با افزودن سطوح مختلف لوتئولین در محیط انجمادی است.
مواد و روش‌ها: نمونه‌های منی از 15 قطعه خروس در سن 28 هفتگی جمع‌آوری شدند. اسپرم گیری از خروس ها به روش مالش پشتی-شکمی انجام گرفت. برای از بین بردن اثرات فردی پس از ارزیابی های اولیه، نمونه‌ها با هم مخلوط شدند و جهت اعمال برنامه های انجمادی مورد استفاده قرار گرفتند. پس از رقیق‌سازی نمونه‌ها و افزودن سطوح صفر (شاهد)، 0/25، 0/5، 0/75، 1 و 1/25 میکرومولار لوتئولین، به رقیق کنندهی پایه (لیک) اسپرم‌ها به نسبت 1:20 افزوده شدند. نمونه‌های مورد آزمایش در دمای °C4 سردسازی شده و سپس در داخل ازت مایع منجمد گردیدند. یخ گشایی نمونه‌ها در دمای 37 درجه سانتی‌گراد انجام گرفت و سپس فراسنجه‌های تحرک بوسیله سیستم کامپیوتری کاسا، زنده‌مانی با تست ایوزین نیگروزین، یکپارچگی غشای پلاسمایی با تست هاست، ریخت‌شناسی بوسیله تست هانکوک و میزان مالون‌دی‌آلدهید تولید شده اندازه گیری شد و سپس داده‌های حاصل در قالب طرح کاملا تصادفی آنالیز شد.
یافته‌ها: نتایج به دست آمده نشان داد که افزودن سطوح 0/75 ، 1 و 1/25 میکرومول سبب افزایش معنی‌داری در تحرک کل و سطوح 0/75 و 1 باعث افزایش تحرک پیش‌رونده و VAP شد. علاوه بر این سطح 1 میکرومول لوتئولین سبب افزایش معنی‌داری در فراسنجهVSL شد (0/05 >P). نتایج نشان داد که سطوح 0/75 و 1 میکرومول باعث افزایش معنی‌داری در زنده‌مانی و سلامت غشا شد و همچنین سطح 0/75 میکرومول لوتئولین باعث شد میزان مالون‌دی‌آلدهید و درصد اسپرم‌هایی با ریخت‌شناسی غیرطبیعی کاهش پیدا کند (0/05 >P).
نتیجه‌گیری: نتایج این پژوهش نشان داد که افزودن لوتئولین در رقیق‌کننده طی انجماد و یخ گشایی می‌تواند تأثیر مثبتی در بهبود کیفیت اسپرم خروس داشته باشد و متعاقبا سبب افزایش تحرک کل و پیش‌رونده بعد از انجماد و یخ‌گشایی گردد و همینطور سطح 0/75 میکرومولار توانست بهترین عملکرد را در بین سطوح مختلف افزوده شده در رقیق کننده داشته باشد.
فهرست منابع
1. Aitken, R.J. 1995. Free radicals, lipid peroxidation and sperm function. Reproduction, Fertility and Development, 7: 659-668. [DOI:10.1071/RD9950659]
2. Altawash, A.S.A., A.Z. Shahneh, H. Moravej and M. Ansari. 2017. Chrysin-induced sperm parameters and fatty acid profile changes improve reproductive performance of roosters. Theriogenology, 104: 72-79. [DOI:10.1016/j.theriogenology.2017.07.022]
3. Aumüller, G. and J. Seitz. 1990. Protein secretion and secretory processes in male accessory sex glands. International review of cytology, 121: 127-231. [DOI:10.1016/S0074-7696(08)60660-9]
4. Azadi, L., M. Tavalaee, M.R. Deemeh, M. Arbabian and M.H. Nasr-Esfahani. 2017. Effects of tempol and quercetin on human sperm function after cryopreservation. CryoLetters, 38: 29-36.
5. Balercia, G., L. Gandini, A. Lenzi and F. Lombardo. 2017. Antioxidants in Andrology. Springer. [DOI:10.1007/978-3-319-41749-3]
6. Bansal, A.K. and G. Bilaspuri. 2011. Impacts of oxidative stress and antioxidants on semen functions. Veterinary medicine international, 2011. [DOI:10.4061/2011/686137]
7. Cao, G., E. Sofic and R.L. Prior. 1997. Antioxidant and prooxidant behavior of flavonoids: structure-activity relationships. Free radical biology and medicine, 22: 749-760. [DOI:10.1016/S0891-5849(96)00351-6]
8. Cormier, M., F. Ghouili, P. Roumaud, W. Bauer, M. Touaibia and L.J. Martin. 2018. Influences of flavones on cell viability and cAMP-dependent steroidogenic gene regulation in MA-10 Leydig cells. Cell biology and toxicology, 34: 23-38. [DOI:10.1007/s10565-017-9395-8]
9. Correa, J., G. Heersche and P. Zavos. 1997. Sperm membrane functional integrity and response of frozen-thawed bovine spermatozoa during the hypoosmotic swelling test incubation at varying temperatures. Theriogenology, 47: 715-721. [DOI:10.1016/S0093-691X(97)00029-0]
10. Daghigh Kia, H. and M. Nazari. 2020. Effect of combination of MitoQ as a targeted antioxidant and Pentoxifylline as a non-targeted in Lake based extender on functional quality of rooster sperm during chilled storage on 4◦C. Journal of Animal Science Research, 30: 71-83.
11. Daghigh Kia, H., M. Nazari and J. Emami. 2021. Effect of cysteamine amino acid supplementation on reduced lipid peroxidation rate of rooster sperm during freezing-thawing. Journal of Animal Science Research, 31: 113-124.
12. DaghighKia, H., F.S.S. Abad, H. Mohamadzadeh, H.V. Dodran and I. Ashrafi. 2017. The effect of Origanum Vulgare extract as natural antioxidant on quality cryopreserved ram sperm. Journal of Animal Science Research, 26: 111-120.
13. El-Sheshtawy, R. and W. El-Nattat. 2017. Impact of silymarin enriched semen extender on bull sperm preservability. Asian Pacific Journal of Reproduction, 6: 81. [DOI:10.12980/apjr.6.20170206]
14. Esterbauer, H. and K.H. Cheeseman. 1990. Determination of aldehydic lipid peroxidation products: malonaldehyde and 4-hydroxynonenal. Methods in enzymology, 186: 407-421. [DOI:10.1016/0076-6879(90)86134-H]
15. Ghorbani, E., D. Bakhshi, H. Hajnajari, M. Ghasemnezhad and P. Taghidoost. 2010. Phenolic compounds and antioxidant activity of some native and imported apple cultivars in Karaj region. Journal of Horticultural Science, 24.
16. Hancock, J. 1956. The morphology of boar spermatozoa. Journal of the Royal Microscopical Society, 76: 84-97. [DOI:10.1111/j.1365-2818.1956.tb00443.x]
17. Ishikawa, T., M. Suzukawa, T. Ito, H. Yoshida, M. Ayaori, M. Nishiwaki, A. Yonemura, Y. Hara and H. Nakamura. 1997. Effect of tea flavonoid supplementation on the susceptibility of low-density lipoprotein to oxidative modification. The American journal of clinical nutrition, 66: 261-266. [DOI:10.1093/ajcn/66.2.261]
18. Jones, D.P. 2002. Redox potential of GSH/GSSG couple: assay and biological significance. Methods in enzymology, 348: 93-112. [DOI:10.1016/S0076-6879(02)48630-2]
19. Kumar, A., J. Prasad, N. Srivastava and S. Ghosh. 2019. Strategies to minimize various stress-related freeze-thaw damages during conventional cryopreservation of mammalian spermatozoa. Biopreservation and biobanking, 17: 603-612. [DOI:10.1089/bio.2019.0037]
20. Kumar, S., U. Sharma, A. Sharma and A. Pandey. 2012. Protective efficacy of Solanum xanthocarpum root extracts against free radical damage: phytochemical analysis and antioxidant effect. Cellular and Molecular Biology, 58: 171-178.
21. Lavranos, G., M. Balla, A. Tzortzopoulou, V. Syriou and R. Angelopoulou. 2012. Investigating ROS sources in male infertility: a common end for numerous pathways. Reproductive Toxicology, 34: 298-307. [DOI:10.1016/j.reprotox.2012.06.007]
22. Lei, X.M., G.W. Liu, G.Y. Wang, G.F. Shi, T.C. Guo and F.Y. Li. 2016. Antioxidant Activity of Flavonoids on Superoxide Anion Free Radical (O^ sub 2*-^). Asian Journal of Chemistry, 28: 2082. [DOI:10.14233/ajchem.2016.19933]
23. Lin, Y., R. Shi, X. Wang and H.M. Shen. 2008. Luteolin, a flavonoid with potential for cancer prevention and therapy. Current Cancer Drug Targets, 8: 634-646. [DOI:10.2174/156800908786241050]
24. Liu, R., F. Meng, L. Zhang, A. Liu, H. Qin, X. Lan, L. Li and G. Du. 2011. Luteolin isolated from the medicinal plant Elsholtzia rugulosa (Labiatae) prevents copper-mediated toxicity in β-amyloid precursor protein Swedish mutation overexpressing SH-SY5Y cells. Molecules, 16: 2084-2096. [DOI:10.3390/molecules16032084]
25. Manju, V., V. Balasubramaniyan and N. Nalini. 2005. Rat colonic lipid peroxidation and antioxidant status: the effects of dietary luteolin on 1, 2-dimethylhydrazine challenge. Cellular and Molecular Biology Letters, 10: 535.
26. Mehaisen, G.M., A. Partyka, Z. Ligocka and W. Niżański. 2020. Cryoprotective effect of melatonin supplementation on post-thawed rooster sperm quality. Animal Reproduction Science, 212: 106238. [DOI:10.1016/j.anireprosci.2019.106238]
27. Moretti, E., L. Mazzi, G. Terzuoli, C. Bonechi, F. Iacoponi, S. Martini, C. Rossi and G. Collodel. 2012. Effect of quercetin, rutin, naringenin and epicatechin on lipid peroxidation induced in human sperm. Reproductive Toxicology, 34: 651-657. [DOI:10.1016/j.reprotox.2012.10.002]
28. Nazari, M., H. Daghigh Kia, M. Ebrahimi, A. Najafi and M. Mehdipour. 2021. Effect of 2, 4 dinitrophenol as a targeted antioxidant on Ghezel ram sperm on functional quality performance after freeze-thawing process of semen on non-breeding season. Animal Sciences Journal, 34: 181-190.
29. Nazari, M., H. Daghigh Kia and A. Najafi. 2021. Effect of combination of 2, 4-dinitrophenol as a targeted antioxidant and luteolin as a non-targeted antioxidant on functional parameter of rooster sperm during chilling storage at 4°C. Animal Sciences Journal, 34: 3-14.
30. Nazari, M., H. Daghigh Kia, A. Najafi, M. Mahdipour and J. Emami. 2021. Effect of different levels of 2, 4 Dinitrophenol and Luteolin on semen quality of rooster during freezing-thawingprocess. Research on Animal Production, 12: 109-117 (In Persian) .
31. Nazari, M. and H. Daghighkia. 2021. Investigating the process of surviving sperm in oviduct to get a method for sperm storage without cryopreservation. Journal of Cell & Tissue, 12: 260-272. [DOI:10.52547/JCT.12.4.260]
32. Nazari, M., H. Daghighkia and A. Najafi. 2021. Study of different levels of Vitamin A supplementation in extender on sperm quality in cooling storing and cryopreservation condition in Ghezel ram. Journal of Cell & Tissue, 12: 134-145. [DOI:10.52547/JCT.12.2.134]
33. Nazari, Q.A., T. Kume, Y. Takada-Takatori, Y. Izumi and A. Akaike. 2013. Protective effect of luteolin on an oxidative-stress model induced by microinjection of sodium nitroprusside in mice. Journal of pharmacological sciences, 122: 109-117. [DOI:10.1254/jphs.13019FP]
34. Rice-Evans, C.A., N.J. Miller and G. Paganga. 1996. Structure-antioxidant activity relationships of flavonoids and phenolic acids. Free radical biology and medicine, 20: 933-956. [DOI:10.1016/0891-5849(95)02227-9]
35. Safa, S., G. Moghaddam, R.J. Jozani, H. Daghigh Kia and H. Janmohammadi. 2016. Effect of vitamin E and selenium nanoparticles on post-thaw variables and oxidative status of rooster semen. Animal Reproduction Science. [DOI:10.1016/j.anireprosci.2016.09.011]
36. Seifi-Jamadi, A., H. Kohram, A.Z. Shahneh, M. Ansari and B. Macías-García. 2016. Quercetin ameliorate motility in frozen-thawed Turkmen stallions sperm. Journal of Equine Veterinary Science, 45: 73-77. [DOI:10.1016/j.jevs.2016.06.078]
37. Seifi-Jamadi, A., H. Kohram, A. Zareh-Shahne, P. Dehghanizadeh and E. Ahmad. 2016. Effect of various concentrations of butylated hydroxyanisole and butylated hydroxytoluene on freezing capacity of Turkman stallion sperm. Animal Reproduction Science, 170: 108-113. [DOI:10.1016/j.anireprosci.2016.04.010]
38. Shimoi, K., S. Masuda, M. Furugori, S. Esaki and N. Kinae. 1994. Radioprotective effect of antioxidative flavonoids in γ-ray irradiated mice. Carcinogenesis, 15: 2669-2672. [DOI:10.1093/carcin/15.11.2669]
39. Tvrda, E., E. Tušimová, A. Kováčik, D. Paál, H. Greifova, A. Abdramanov and N. Lukáč. 2016. Curcumin has protective and antioxidant properties on bull spermatozoa subjected to induced oxidative stress. Animal Reproduction Science, 172: 10-20. [DOI:10.1016/j.anireprosci.2016.06.008]
40. Ueda, H., C. Yamazaki and M. Yamazaki. 2002. Luteolin as an anti-inflammatory and anti-allergic constituent of Perilla frutescens. Biological and Pharmaceutical Bulletin, 25: 1197-1202. [DOI:10.1248/bpb.25.1197]
41. Xin, S.B., H. Yan, J. Ma, Q. Sun and L. Shen. 2016. Protective effects of luteolin on lipopolysaccharide-induced acute renal injury in mice. Medical science monitor: international medical journal of experimental and Clinical Research, 22: 5173. [DOI:10.12659/MSM.898177]
42. Yahyazadeh, A. and B. Altunkaynak. 2019. Protective effects of luteolin on rat testis following exposure to 900 MHz electromagnetic field. Biotechnic & Histochemistry, 94: 298-307. [DOI:10.1080/10520295.2019.1566568]
43. Ziaeirad, H., M. Roostaei and M. Mohammadi. 2016. Effect of silymarin on rooster semen during storage at 4 °C. Journal of Animal Science Research, 26: 1-13.
44. Zhang, J., X. Bao, M. Zhang, Z. Zhu, L. Zhou, Q. Chen, Q. Zhang and B. Ma. 2019. MitoQ ameliorates testis injury from oxidative attack by repairing mitochondria and promoting the Keap1-Nrf2 pathway. Toxicology and Applied Pharmacology, 370: 78-92. [DOI:10.1016/j.taap.2019.03.001]
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
