دوره 16، شماره 4 - ( زمستان 1404 )
جلد 16 شماره 4 صفحات 53-43 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Nouri M, Tabatabaei Vakili S, Mirzadeh K, Aghaei A, Dorostghoal M. (2025). The Effect of Camellia Oil and Tribulus terrestris Extract on Sperm Parameters and Seminal Plasma Concentrations of Antioxidant Enzymes and Malondialdehyde in Aged Broiler Breeder Roosters. Res Anim Prod. 16(4), 43-53. doi:10.61882/rap.2025.1517
URL: http://rap.sanru.ac.ir/article-1-1517-fa.html
URL: http://rap.sanru.ac.ir/article-1-1517-fa.html
نوری ماهرخ، طباطبائی وکیلی صالح، میرزاده خلیل، آقایی علی، درست قول مهران.(1404). تأثیر روغن کاملینا و عصاره خارخاسک بر فراسنجه های اسپرم، آنزیمهای آنتیاکسیدانی و غلظت مالون دی آلدئید پلاسمای منی در خروس های مسن مادر گوشتی پژوهشهاي توليدات دامي 16 (4) :53-43 10.61882/rap.2025.1517
1- گروه علوم دامی، دانشکده علوم دامی و صنایع غذایی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی خوزستان، ملاثانی، ایران
2- گروه زیست شناسی، دانشکده علوم، دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران
2- گروه زیست شناسی، دانشکده علوم، دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران
چکیده: (1404 مشاهده)
چکیده مبسوط
مقدمه و هدف: اسپرم طی فرآیند اسپرمسازی، مقدار زیادی از سیتوپلاسم خود را از دست می دهد و از آنجا که بیشتر آنزیمها در سیتوپلاسم سلول هستند، بنا بر این اسپرم ظرفیت آنتیاکسیدانی اندکی دارد. در حالت طبیعی در مایع منی ترکیبات آنتیاکسیدان محافظ اسپرم وجود دارند. ترکیبات آنتی اکسیدانی در طیور از سه ترکیب شامل گلوتاتیون پراکسیداز، سوپر پراکسید دیسموتاز و کاتالاز تشکیل شده اند. اما این ترکیبات آنتیاکسیدانی در تولیدمثل عادی فقط مدت زمان کوتاهی فعال هستند. طی تحقیقات نشان داده شد که افزودن مواد آنتیاکسیدانی به جیره طیور سبب کاهش پراکسیداسیون لیپیدهای منی گردید. گیاهان دارویی میتوانند از طریق ارتقاء سیستم آنتیاکسیدانی بدن، اثرات حمایتی بالقوهای داشته باشند. این ترکیبات گیاهی قادرند تا به طور مستقیم تولید رادیکالهای آزاد اکسیژن طی انواع تنشها را از طریق مهار آنزیمهای تولیدکننده کاهش دهند. افزودن اسیدهای چرب غیر اشباع به جیرههای طیور به دلیل نقش مهمی که این اسیدهای چرب در متابولیسم و تولید انرژی، ترشحات اندوکرینی، سیالیت غشای اسپرم و عملکردهای باروری دارند، ضروری به نظر میرسد. با توجه به فقدان سیستم آنزیمی برای سنتز بافتی اسیدهای چرب ضروری طیور، استفاده از این منابع در جیره گلههای مادر پیشنهاد میشود. بنا بر این، این پژوهش با هدف مطالعهی تأثیر روغن کاملینا و عصاره خارخاسک بر فراسنجه های اسپرمی، آنزیمهای آنتیاکسیدنی و غلظت مالون دی آلدئید پلاسمای منی خروس های مادر گوشتی انجام گرفت.
مواد و روشها: آزمایش حاضر با استفاده از 36 قطعه خروس والد گوشتی راس 308 بهصورت آزمایش فاکتوریل 2×3 شامل سه سطح روغن کاملینا و دو سطح عصاره خارخاسک به مدت 10 هفته با شش تیمار و شش تکرار انجام شد. تیمارهای آزمایشی شامل 1- شاهد (کنترل)، 2- جیره حاوی 1 درصد روغن کاملینا، 3- جیره حاوی 2 درصد روغن کاملینا، 4- جیره پایه به همراه 10 میلیگرم عصاره خارخاسک به ازای هر کیلوگرم وزن بدن، 5- جیره حاوی 1 درصد روغن کاملینا به علاوه 10 میلیگرم عصاره خارخاسک به ازای هر کیلوگرم وزن بدن، و 6- جیره حاوی 2 درصد روغن کاملینا به علاوه 10 میلیگرم عصاره خارخاسک به ازای هر کیلوگرم وزن بدن بودند. فراسنجههای منی شامل حجم و غلظت و نیز درصد تحرک کل، تحرک پیش رونده، زنده مانی، سلامت غشای پلاسمایی و ناهنجاری های مورفولوژیکی اسپرم ها در پایان دوره مورد سنجش قرار گرفتند. غلظت مالون دی آلدئید به عنوان شاخص پراکسیداسیون و فعالیت آنزیمهای آنتیاکسیدانی شامل گلوتاتیون پراکسیداز، سوپراکسید دیسموتاز، کاتالاز و نیز گلوتاتیون پلاسمای منی در هفته پایانی آزمایش اندازهگیری شدند.
یافته ها: اثرات اصلی روغن کاملینا و عصاره خارخاسک بر حجم منی، غلظت اسپرم، تحرک کل و پیش رونده، زندهمانی و ناهنجاری های مورفولوژیک اسپرم ها، معنیدار نبودند. اما سلامت غشای پلاسمایی اسپرم ها تحت تأثیر اثرات اصلی خارخاسک قرارگرفت، به طوریکه پرندگان تغذیه شده با سطح 10 میلی گرم خارخاسک، درصد سلامت غشای پلاسمایی اسپرم کمتری را نسبت به شاهد نشان دادند (0/05 > P). در بررسی اثرات متقابل روغن کاملینا و عصاره خارخاسک بر شاخص های کمی و کیفی اسپرم ها شامل حجم منی و نیز غلظت، تحرک کل و پیش رونده، زنده مانی و سلامت غشای پلاسمایی اسپرم ها تغییر معنی داری نداشتند. اما درصد اسپرم های ناهنجار تحت تأثیر این اثر متقابل قرارگرفت، به نحوی که درصد ناهنجاری های مورفولوژیکی اسپرم ها در تیمار 2 درصد روغن کاملینا بدون عصاره خارخاسک، به طور معنی داری کمتر از تیمارهای 10 میلی گرم خارخاسک بدون روغن کاملینا و 2 درصد روغن کاملینا بدون عصاره خارخاسک بود، هرچند که اختلاف آماری معنی داری با شاهد نداشتند. همچنین، شاخص پراکسیداسیون لیپیدی منی از طریق سنجش غلظت مالون دی آلدئید، تحت تأثیر اثرات اصلی روغن کاملینا، عصاره خارخاسک و اثرات متقابل روغن کاملینا و عصاره خارخاسک پلاسمای منی قرار نگرفت (0/05 < P). اثرات اصلی روغن کاملینا بر آنزیم آنتیآکسیدانی معنیدار نبودند اما آنزیم سوپراکسید دیسموتاز تحت تأثیر اثرات اصلی عصاره خارخاسک قرارگرفت (0/05 > P)، به طوریکه در پرندگان تغذیه شده با سطح 10 میلیگرم عصاره خارخاسک، غلظت این آنزیم افزایش یافت. در بررسی اثر متقابل، استفاده هم زمان سطح 1 درصد روغن کاملینا و 10 میلیگرم عصاره خارخاسک باعث افزایش آنزیمهای گلوتاتیون پراکسیداز و سوپراکسید دیسموتاز نسبت به سطوح صفر درصد روغن کاملینا و صفر میلیگرم عصاره خارخاسک شد. مقادیر کاتالاز و گلوتاتیون تحت تأثیر اثرات متقابل روغن کاملینا و عصاره خارخاسک قرارنگرفتند (0/05 < P).
نتیجهگیری: براساس یافته های پژوهش حاضر، می توان نتیجه گرفت که افزودن روغن کاملینا و عصاره خارخاسک به جیره هرچند که اثر چشمگیری بر اغلب فراسنجه های اسپرم نداشت، اما استفاده همزمان 1 درصد روغن کاملینا و 10 میلیگرم عصاره خارخاسک باعث بهبود میزان آنزیمهای گلوتاتیون پراکسیداز و سوپر اکسید دیسموتاز منی شد. لذا، بهبود شرایط آنتی اکسیدانی منی با استفاده عوامل گیاهی لااقل در مورد روغن کاملینا و عصاره خارخاسک، به تنهایی نمی تواند دلیلی بر ارتقای فراسنجه های کیفی اسپرم ها در خروس های مولد مسن باشد و تحقیقات بیشتری را می طلبد.
مقدمه و هدف: اسپرم طی فرآیند اسپرمسازی، مقدار زیادی از سیتوپلاسم خود را از دست می دهد و از آنجا که بیشتر آنزیمها در سیتوپلاسم سلول هستند، بنا بر این اسپرم ظرفیت آنتیاکسیدانی اندکی دارد. در حالت طبیعی در مایع منی ترکیبات آنتیاکسیدان محافظ اسپرم وجود دارند. ترکیبات آنتی اکسیدانی در طیور از سه ترکیب شامل گلوتاتیون پراکسیداز، سوپر پراکسید دیسموتاز و کاتالاز تشکیل شده اند. اما این ترکیبات آنتیاکسیدانی در تولیدمثل عادی فقط مدت زمان کوتاهی فعال هستند. طی تحقیقات نشان داده شد که افزودن مواد آنتیاکسیدانی به جیره طیور سبب کاهش پراکسیداسیون لیپیدهای منی گردید. گیاهان دارویی میتوانند از طریق ارتقاء سیستم آنتیاکسیدانی بدن، اثرات حمایتی بالقوهای داشته باشند. این ترکیبات گیاهی قادرند تا به طور مستقیم تولید رادیکالهای آزاد اکسیژن طی انواع تنشها را از طریق مهار آنزیمهای تولیدکننده کاهش دهند. افزودن اسیدهای چرب غیر اشباع به جیرههای طیور به دلیل نقش مهمی که این اسیدهای چرب در متابولیسم و تولید انرژی، ترشحات اندوکرینی، سیالیت غشای اسپرم و عملکردهای باروری دارند، ضروری به نظر میرسد. با توجه به فقدان سیستم آنزیمی برای سنتز بافتی اسیدهای چرب ضروری طیور، استفاده از این منابع در جیره گلههای مادر پیشنهاد میشود. بنا بر این، این پژوهش با هدف مطالعهی تأثیر روغن کاملینا و عصاره خارخاسک بر فراسنجه های اسپرمی، آنزیمهای آنتیاکسیدنی و غلظت مالون دی آلدئید پلاسمای منی خروس های مادر گوشتی انجام گرفت.
مواد و روشها: آزمایش حاضر با استفاده از 36 قطعه خروس والد گوشتی راس 308 بهصورت آزمایش فاکتوریل 2×3 شامل سه سطح روغن کاملینا و دو سطح عصاره خارخاسک به مدت 10 هفته با شش تیمار و شش تکرار انجام شد. تیمارهای آزمایشی شامل 1- شاهد (کنترل)، 2- جیره حاوی 1 درصد روغن کاملینا، 3- جیره حاوی 2 درصد روغن کاملینا، 4- جیره پایه به همراه 10 میلیگرم عصاره خارخاسک به ازای هر کیلوگرم وزن بدن، 5- جیره حاوی 1 درصد روغن کاملینا به علاوه 10 میلیگرم عصاره خارخاسک به ازای هر کیلوگرم وزن بدن، و 6- جیره حاوی 2 درصد روغن کاملینا به علاوه 10 میلیگرم عصاره خارخاسک به ازای هر کیلوگرم وزن بدن بودند. فراسنجههای منی شامل حجم و غلظت و نیز درصد تحرک کل، تحرک پیش رونده، زنده مانی، سلامت غشای پلاسمایی و ناهنجاری های مورفولوژیکی اسپرم ها در پایان دوره مورد سنجش قرار گرفتند. غلظت مالون دی آلدئید به عنوان شاخص پراکسیداسیون و فعالیت آنزیمهای آنتیاکسیدانی شامل گلوتاتیون پراکسیداز، سوپراکسید دیسموتاز، کاتالاز و نیز گلوتاتیون پلاسمای منی در هفته پایانی آزمایش اندازهگیری شدند.
یافته ها: اثرات اصلی روغن کاملینا و عصاره خارخاسک بر حجم منی، غلظت اسپرم، تحرک کل و پیش رونده، زندهمانی و ناهنجاری های مورفولوژیک اسپرم ها، معنیدار نبودند. اما سلامت غشای پلاسمایی اسپرم ها تحت تأثیر اثرات اصلی خارخاسک قرارگرفت، به طوریکه پرندگان تغذیه شده با سطح 10 میلی گرم خارخاسک، درصد سلامت غشای پلاسمایی اسپرم کمتری را نسبت به شاهد نشان دادند (0/05 > P). در بررسی اثرات متقابل روغن کاملینا و عصاره خارخاسک بر شاخص های کمی و کیفی اسپرم ها شامل حجم منی و نیز غلظت، تحرک کل و پیش رونده، زنده مانی و سلامت غشای پلاسمایی اسپرم ها تغییر معنی داری نداشتند. اما درصد اسپرم های ناهنجار تحت تأثیر این اثر متقابل قرارگرفت، به نحوی که درصد ناهنجاری های مورفولوژیکی اسپرم ها در تیمار 2 درصد روغن کاملینا بدون عصاره خارخاسک، به طور معنی داری کمتر از تیمارهای 10 میلی گرم خارخاسک بدون روغن کاملینا و 2 درصد روغن کاملینا بدون عصاره خارخاسک بود، هرچند که اختلاف آماری معنی داری با شاهد نداشتند. همچنین، شاخص پراکسیداسیون لیپیدی منی از طریق سنجش غلظت مالون دی آلدئید، تحت تأثیر اثرات اصلی روغن کاملینا، عصاره خارخاسک و اثرات متقابل روغن کاملینا و عصاره خارخاسک پلاسمای منی قرار نگرفت (0/05 < P). اثرات اصلی روغن کاملینا بر آنزیم آنتیآکسیدانی معنیدار نبودند اما آنزیم سوپراکسید دیسموتاز تحت تأثیر اثرات اصلی عصاره خارخاسک قرارگرفت (0/05 > P)، به طوریکه در پرندگان تغذیه شده با سطح 10 میلیگرم عصاره خارخاسک، غلظت این آنزیم افزایش یافت. در بررسی اثر متقابل، استفاده هم زمان سطح 1 درصد روغن کاملینا و 10 میلیگرم عصاره خارخاسک باعث افزایش آنزیمهای گلوتاتیون پراکسیداز و سوپراکسید دیسموتاز نسبت به سطوح صفر درصد روغن کاملینا و صفر میلیگرم عصاره خارخاسک شد. مقادیر کاتالاز و گلوتاتیون تحت تأثیر اثرات متقابل روغن کاملینا و عصاره خارخاسک قرارنگرفتند (0/05 < P).
نتیجهگیری: براساس یافته های پژوهش حاضر، می توان نتیجه گرفت که افزودن روغن کاملینا و عصاره خارخاسک به جیره هرچند که اثر چشمگیری بر اغلب فراسنجه های اسپرم نداشت، اما استفاده همزمان 1 درصد روغن کاملینا و 10 میلیگرم عصاره خارخاسک باعث بهبود میزان آنزیمهای گلوتاتیون پراکسیداز و سوپر اکسید دیسموتاز منی شد. لذا، بهبود شرایط آنتی اکسیدانی منی با استفاده عوامل گیاهی لااقل در مورد روغن کاملینا و عصاره خارخاسک، به تنهایی نمی تواند دلیلی بر ارتقای فراسنجه های کیفی اسپرم ها در خروس های مولد مسن باشد و تحقیقات بیشتری را می طلبد.
فهرست منابع
1. Abdulla, N. R., Loh, T. C., Akit, H., Sazili, A. Q., Foo, H. L., Kareem, K. Y., & Abdul Rahim, R. (2017). Effects of dietary oil sources, calcium and phosphorus levels on growth performance, carcass characteristics and bone quality of broiler chickens. Journal of Applied Animal Research, 45(1), 423-429. doi.org/10.1080/09712119.2016.1206903. [DOI:10.1080/09712119.2016.1206903]
2. Akhlaghi, A., Ahangari, Y. J., Navidshad, B., Pirsaraei, Z. A., Zhandi, M., Deldar, H. & Peebles, E. D. (2014). Improvements in semen quality, sperm fatty acids, and reproductive performance in aged Cobb 500 breeder roosters fed diets containing dried ginger rhizomes (Zingiber officinale). Poultry Science, 93(5), 1236-1244.
https://doi.org/10.3382/ps.2013-03617 [DOI:10.3382/ps.2013-03617.]
3. Aldaddou, W. A., Aljohani, A. S., Ahmed, I. A., Al-Wabel, N. A., & El-Ashmawy, I. M. (2022). Ameliorative effect of methanolic extract of Tribulus terrestris L. on nicotine and lead-induced degeneration of sperm quality in male rats. Journal of Ethnopharmacology, 295, 115337. doi.org/10.1016/j.jep.2022.115337. [DOI:10.1016/j.jep.2022.115337]
4. Asghari Moghadam, M., Hashemi, S. R., Mehri, M., Karamzadeh Dehaghani, A., & Davoodi H. (2023). The influence of different sources of oral selenium supplementation on the total antioxidant capacity (TAC), glutathione peroxidase (GPx) activity, and lipid peroxidation of semen in aged broiler breeder roosters. Research on Animal Production, 14(4), 68-77. doi.org/10.1016/j.jep.2022.115337. [DOI:10.61186/rap.14.42.68]
5. [In Persian]
6. Asl, R. S., Shariatmadari, F., Sharafi, M., Torshizi, M. A. K., & Shahverdi, A. (2018). Improvements in semen quality, sperm fatty acids, and reproductive performance in aged Ross breeder roosters fed a diet supplemented with a moderate ratio of n-3: n-6 fatty acids. Poultry Science, 97(11), 4113-4121.
https://doi.org/10.3382/ps/pey278 [DOI:10.3382/ps/pey278.]
7. Bazyar, M., Sharafi, M., & Shahverdi, A. (2019). Changes in seminal parameters and hormonal profile with use of aromatase inhibitor in management of aging broiler breeder roosters. Poultry Science, 98(11), 6100-6107.
https://doi.org/10.3382/ps/pez325 [DOI:10.3382/ps/pez325.]
8. Cerolini, S., Pizzi, F., Gliozzi, T., Maldjian, A., Zaniboni, L., & Parodi, L. (2003). Lipid manipulation of chicken semen by dietary means and its relation to fertility: a review. World's Poultry Science Journal, 59(1), 65-75. doi.org/10.1079/WPS20030003. [DOI:10.1079/WPS20030003]
9. Cerolini, S., Surai, P. F., Speake, B. K., & Sparks, N. H. C. (2005). Dietary fish and evening primrose oil with vitamin E effects on semen variables in cockerels. British Poultry Science, 46(2), 214-222. doi.org/10.1080/00071660500065839. [DOI:10.1080/00071660500065839]
10. Dakshayini P. N., & Mahaboob Basha P., (2018). Phytochemical screening and in vitro antioxidant potential of Tribulus terrestris fruit and Mesua ferrea flower extracts: A comparative study. International Journal of Pharmacy and Pharmaceutical Sciences, 10(3), 70-75. [DOI:10.22159/ijpps.2018v10i3.24021]
11. Eidhin, D. N., Burke, J., & O'beirne, D. (2003). Oxidative stability of ω3‐rich camelina oil and camelina oil‐based spread compared with plant and fish oils and sunflower spread. Journal of Food Science, 68(1), 345-353. doi.org/10.1111/j.1365-2621.2003.tb14163.x. [DOI:10.1111/j.1365-2621.2003.tb14163.x]
12. Emamverdi, M., Zhandi, M., Shahneh, A. Z., Sharafi, M., Akhlaghi, A., Motlagh, M. K., & Davachi, N. D. (2014). Flow cytometric and microscopic evaluation of post-thawed ram semen cryopreserved in chemically defined home-made or commercial extenders. Animal Production Science, 55(4), 551-558. doi.org/10.1071/AN13215. [DOI:10.1071/AN13215]
13. Farhadi, R., Farshad, A., Rostamzadeh, J., & Najafi, A. (2024). The Effects of adding different levels of curcumin nanoparticles and sucrose sugar on qualitative and structural parameters of ram epididymal sperm after cooling. Research on Animal Production, 15(2), 44 -52. doi.org/10.61186/rap.15.2.44. [DOI:10.61186/rap.15.2.44]
14. [In Persian]
15. Feyzi, S., Sharafi, M., & Rahimi, S. (2018). Stress preconditioning of rooster semen before cryopreservation improves fertility potential of thawed sperm. Poultry Science, 97(7), 2582-2590. doi: 10.3382/ps/pey067 [DOI:10.3382/ps/pey067]
16. Gauthaman, K., & Ganesan, A. P. (2008). The hormonal effects of Tribulus terrestris and its role in the management of male erectile dysfunction-an evaluation using primates, rabbit and rat. Phytomedicine, 15(1-2), 44-54. doi.org/10.1016/j.phymed.2007.11.011. [DOI:10.1016/j.phymed.2007.11.011]
17. Hrastar, R., Petrisic, M. G., Ogrinc, N., & Kosir, I. J. (2009). Fatty acid and stable carbon isotope characterization of Camelina sativa oil: implications for authentication. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 57(2), 579-585. doi.org/10.1021/jf8028144. [DOI:10.1021/jf8028144]
18. Jiang, L., Wu, J., Liu, S., Wu, W., & Liao, L. (2023). Effect of alkaline microcrystalline cellulose deacidification on chemical composition, antioxidant activity and volatile compounds of camellia oil. LWT, 186, 115214. doi.org/10.1016/j.lwt.2023.115214. [DOI:10.1016/j.lwt.2023.115214]
19. Kamboj, P., Aggarwal, M., Puri, S., & Singla, S. K. (2011). Effect of aqueous extract of Tribulus terrestris on oxalate-induced oxidative stress in rats. Indian Journal of Nephrology, 21(3), 154-159. doi.org/10.4103/0971-4065.83727. [DOI:10.4103/0971-4065.83727]
20. Karimi Jashni, H., Malekzadeh Shiravani, S., & Hoshmand, F. (2022). The effect of the Tribulus terrestris extract on spermatogenesis in the rat. Pars Journal of Medical Sciences, 9(4), 8-13. doi.org/ 10.29252/JMJ.9.4.8. [DOI:10.29252/jmj.9.4.8]
21. Kazemizadeh, A., Zare Shahneh, A., Zeinoaldini, S., Yousefi, A. R., Mehrabani Yeganeh, H., Ansari Pirsaraei, Z., & Akhlaghi, A. (2019). Effects of dietary curcumin supplementation on seminal quality indices and fertility rate in broiler breeder roosters. British Poultry Science, 60(3), 256-264. doi.org/10.1080/00071668.2019.1571165. [DOI:10.1080/00071668.2019.1571165]
22. Khaleghi, S., Bakhtiari, M., Asadmobini, A., & Esmaeili, F. (2017). Tribulus terrestris extract improves human sperm parameters in vitro. Journal of Evidence-based Complementary & Alternative Medicine, 22(3), 407-412. doi.org/10.1177/2156587216668110. [DOI:10.1177/2156587216668110]
23. Khan, R. U. (2011). Antioxidants and poultry semen quality. World's Poultry Science Journal, 67(2), 297-308. doi.org/10.1017/S0043933911000316. [DOI:10.1017/S0043933911000316]
24. Liu, Q., Zhou, Y. F., Duan, R. J., Wei, H. K., Jiang, S. W., & Peng, J. (2015). Effects of dietary n-6: n-3 fatty acid ratio and vitamin E on semen quality, fatty acid composition and antioxidant status in boars. Animal Reproduction Science, 162, 11-19. doi.org/10.1016/j.anireprosci.2015.08.012. [DOI:10.1016/j.anireprosci.2015.08.012]
25. Liu, X., Wu, Y., Gao, Y., Jiang, Z., Zhao, Z., Zeng, W & Xiao, Z. (2024). Valorization of Camellia oleifera oil processing byproducts to value-added chemicals and biobased materials: A critical review. Green Energy & Environment, 9(1), 28-53. doi.org/10.1016/j.lwt.2023.115056. [DOI:10.1016/j.gee.2022.12.002]
26. Martino-Andrade, A. J., Morais, R. N., Spercoski, K. M., Rossi, S. C., Vechi, M. F., Golin, M., ... & Dalsenter, P. R. (2010). Effects of Tribulus terrestris on endocrine sensitive organs in male and female Wistar rats. Journal of Ethnopharmacology, 127(1), 165-170. doi.org/10.1016/j.jep.2009.09.031. [DOI:10.1016/j.jep.2009.09.031]
27. Mehdipour, M., Kia, H. D., Moghaddam, G., & Hamishehkar, H. (2018). Effect of egg yolk plasma and soybean lecithin on rooster frozen-thawed sperm quality and fertility. Theriogenology, 116, 89-94.
https://doi.org/10.1016/j.theriogenology.2018.05.013 [DOI:10.1016/j.theriogenology.2018.05.013.]
28. Ommati, M. M., Zamiri, M. J., Akhlaghi, A., Atashi, H., Jafarzadeh, M. R., Rezvani, M. R., & Saemi, F. (2013). Seminal characteristics, sperm fatty acids, and blood biochemical attributes in breeder roosters orally administered with sage (Salvia officinalis) extract. Animal Production Science, 53(6), 548-554. doi.org/10.1071/AN12257. [DOI:10.1071/AN12257]
29. Ostrikov, A. N., Kleimenova, N. L., Kopylov, M. V., & Bolgova, I. N. (2021). The study of the fatty acid composition of camelina oil obtained by cold pressing. Earth and Environmental Science, 640, 042009. [DOI:10.1088/1755-1315/640/4/042009]
30. Palani, M., Kalaiselvan, S., Mark, J. A. M., Chandran, K., & Ekhambaram, V. (2024). Green synthesis of CuO nanoparticles: A promising role of antioxidant and antimicrobial activity by using Tribulus terrestris L. Aspects of Molecular Medicine, 4, 100049. doi.org/10.1016/j.amolm.2024.100049. [DOI:10.1016/j.amolm.2024.100049]
31. Pavlista, A. D., Isbell, T. A., Baltensperger, D. D., & Hergert, G. W. (2011). Planting date and development of spring-seeded irrigated canola, brown mustard and camelina. Industrial Crops and Products, 33(2), 451-456. doi.org/10.1016/j.indcrop.2010.10.029. [DOI:10.1016/j.indcrop.2010.10.029]
32. Popa, A. L., Drumea, V., Nita, R. A., Florea, M. A., Olariu, L., Jurcoane, S., & Cristea, S. (2019). A physico-chemical characterization of oil from Camelina sativa seeds grown in Romania. Romanian Biotechnological Letters, 24(5), 776-782. doi: 10.25083/rbl/24.5/776.782. [DOI:10.25083/rbl/24.5/776.782]
33. Salgado, R. M., Marques‐Silva, M. H., Gonçalves, E., Mathias, A. C., Aguiar, J. G., & Wolff, P. (2017). Effect of oral administration of Tribulus terrestris extract on semen quality and body fat index of infertile men. Andrologia, 49(5), e12655. doi.org/10.1111/and.12655. [DOI:10.1111/and.12655]
34. Sandeep, P. M., Bovee, T. F., & Sreejith, K. (2015). Anti-androgenic activity of Nardostachys jatamansi DC and Tribulus terrestris L. and their beneficial effects on polycystic ovary syndrome-Induced rat models. Metabolic Syndrome and Related Disorders, 13(6), 248-254. doi.org/10.1089/met.2014.013. [DOI:10.1089/met.2014.0136]
35. Sharawy, S. M., Saleh, N. H., Attalah, S. A., Absy, G. M., & Doaa, H. K. (2015). Effect of plant extract of Tribulus terrestris and probiotics on the reproductive performance, total cholesterol and testosterone hormone levels of rams. MENA Science Journal, 1(1), 14-19. doi.org/10.5281/zenodo.21955.
36. Velmurugan, N., Kalpana, D., Cho, J. Y., & Lee, Y. S. (2018). Chemical composition and antioxidant capacity of the aqueous extract of Phellodendron amurense. Journal of Forestry Research, 29, 1041-1048. doi.org/ 10.1007/s11676-017-0532-2. [DOI:10.1007/s11676-017-0532-2]
37. Verma, A., & Kanwar, K. C. (1999). Effect of vitamin E on human sperm motility and lipid peroxidation in vitro. Asian Journal of Andrology, 1(3), 151-4.
38. Wang, L., Zhang, Y., Chen, J. F., Luo, Y. Y., Zou, C. X., Qin, L. K., & Jia, Y. L. (2023). Study on preparation and properties of camellia oleifera seed oil microcapsules by complex coacervation and spray drying. LWT, 184, 115056. doi.org/10.1016/j.lwt.2023.115056. [DOI:10.1016/j.lwt.2023.115056]
39. Zanini, S. F., Torres, C. A. A., Bragagnolo, N., Turatti, J. M., Silva, M. G., & Zanini, M. S. (2003). Evaluation of the ratio of ω6: ω3 fatty acids and vitamin E levels in the diet on the reproductive performance of cockerels. Archives of Animal Nutrition, 57(6), 429-442. doi.org/10.1080/0003942032000161072. [DOI:10.1080/0003942032000161072]
40. Zanussi, H. P., Shariatmadari, F., Sharafi, M., & Ahmadi, H. (2019). Dietary supplementation with flaxseed oil as source of omega-3 fatty acids improves seminal quality and reproductive performance in aged broiler breeder roosters. Theriogenology, 130, 41-48. doi.org/10.1016/j.theriogenology.2019.02.030. [DOI:10.1016/j.theriogenology.2019.02.030]
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
