دوره 12، شماره 33 - ( پاییز 1400 1400 )                   جلد 12 شماره 33 صفحات 112-103 | برگشت به فهرست نسخه ها


XML English Abstract Print


گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی دانشگاه لرستان
چکیده:   (2007 مشاهده)
      ذخیره ‌سازی طولانی ‌مدت اسپرم مایع موجب تغییر در ساختارهای ریخت­شناسی و عملکردی اسپرم می‌شود. این مطالعه جهت تعیین اثر سطوح مختلف شیره نارگیل در رقیق ­کننده­ اسپرم قوچ بر فراسنجه­ های کیفی اسپرم پس از نگهداری در شرایط سرد انجام گرفت. از تعداد سه رأس قوچ نژاد لری، با واژن مصنوعی، دو بار در هفته اسپرم­ گیری شد. بعد از جمع‌آوری و ارزیابی اولیه نمونه‌ها، انزا­ل های منتخب، با هم مخلوط شده و به شش قسمت­ مساوی تقسیم شدند و هر قسمت به نسبت یک به 20، با رقیق­ کننده ­های مختلف، رقیق شدند. شش رقیق­ کننده با اضافه کردن سطوح مختلف شیره نارگیل (5، 10، 15 و 20 درصد (حجم/ حجم) و زرده تخم‌ مرغ (15 درصد (حجم/حجم)) به رقیق‌کننده بر پایه تریس، آماده شدند. سپس نمونه­ ها، در دمای پنج درجه سانتی‌گراد برای مدت 72 ساعت نگهداری شدند. نمونه ­ها در زمان‌های صفر، 3، 6، 24، 48 و 72 ساعت از لحاظ فراسنجه های حرکتی (سامانه آنالیز کامپیوتری)، زنده ­مانی (رنگ‌آمیزی ائوزین نیگروزین)، ریخت­ شناسی (محلول هانکوک)، یکپارچگی غشا (روش هاس)، میزان پراکسیداسیون لیپیدها و نرخ قطعه ‌قطعه شدن DNA اسپرم، مورد ارزیابی قرار گرفتند. آزمایش در قالب طرح کاملاً تصادفی انجام شد و داده­ ها با استفاده از نرم‌افزار آماریSAS، آنالیز شدند. نتایج نشان داد که رقیق­ کننده­ های حاوی شیره نارگیل، از نظر برخی فراسنجه­ های حرکتی شامل VSL،ALH ,VAP ,VCL  با رقیق­ کننده حاوی زرده تخم  مرغ، تفاوت معنی­ داری نداشتند (0/05p≥). اما از نظر جنبایی کل و پیش­رونده اسپرم، Lin، STR و BCF، نسبت به رقیق ­کننده حاوی زرده، به طور معنی ­داری، کمتر بودند (05/0p<). فراسنجه ­های زنده­ مانی، فعالیت غشای سلول و درصد اسپرم هنجار در همه تیمارها مشابه بود (0/05p≥). همچنین، میزان پراکسیداسیون لیپیدها و درصد اسپرم­ های با DNA آسیب دیده، تحت تأثیر نوع رقیق­ کننده قرار نگرفت. در کل، استفاده از شیره نارگیل در رقیق­ کننده اسپرم قوچ، نتوانست فراسنجه­ های حرکتی اسپرم را در حد زرده حفظ نماید و جایگزین مناسبی برای زرده در رقیق­ کننده اسپرم قوچ نبود.
متن کامل [PDF 1521 kb]   (434 دریافت)    
نوع مطالعه: پژوهشي | موضوع مقاله: فیزیولوژی
دریافت: 1399/12/6 | ویرایش نهایی: 1400/9/10 | پذیرش: 1400/5/23 | انتشار: 1400/7/10

فهرست منابع
1. Ahmadi Hamedani, M., Y. Jafari Ahangari and S. Zerehdaran. 2015. The effect of various levels of egg yolk on quality of Zel ram spermatozoa in cooling and freezing conditions. Research On Animal Production, 5: 122-134 (In Persian).
2. Aitken, R.J., G.N. De Iuliis, J.M. Finnie, A. Hedges and R.I. McLachlan. 2010. Analysis of the relationships between oxidative stress, DNA damage and sperm vitality in a patient population: development of diagnostic criteria. Human Reproduction, 25: 2415-24. [DOI:10.1093/humrep/deq214]
3. Allai, L., X. Druart, M. Öztürk, A. BenMoula, B. Nasser and B. El Amiri. 2016. Protective effects of Opuntia ficus-indica extract on ram sperm quality, lipid peroxidation and DNA fragmentation during liquid storage. Animal Reproduction Science, 175: 1-9. [DOI:10.1016/j.anireprosci.2016.09.013]
4. Barbas, J. and R. Mascarenhas. 2009. Cryopreservation of domestic animal sperm cells. Cell and tissue banking, 10: 49-62. [DOI:10.1007/s10561-008-9081-4]
5. Bilodeau, J.F., S. Chatterjee, M.A. Sirard and C. Gagnon. 2000. Levels of antioxidant defenses are decreased in bovine spermatozoa after a cycle of freezing and thawing. Molecular Reproduction and Development: Incorporating Gamete Research, 55: 282-288. https://doi.org/10.1002/(SICI)1098-2795(200003)55:3<282::AID-MRD6>3.0.CO;2-7 [DOI:10.1002/(SICI)1098-2795(200003)55:33.0.CO;2-7]
6. Bottini-Luzardo, M., F. Centurión-Castro, M. Alfaro-Gamboa, R. Aké-López and J. Herrera-Camacho. 2012. Effect of addition of coconut water (Cocos nucifera) to the freezing media on post-thaw viability of boar sperm. Tropical animal health and production, 45: 101-106. [DOI:10.1007/s11250-012-0179-0]
7. Brasileiro, L.S., L.G.T.M. Segabinazzi, E. Menezes, C.C. Salgueiro, G. Novello, V.F. da Cunha Scheeren, M., A. Alvarenga and J.F. Nunes. 2019. Coconut water as an extender component for cooled equine sperm. Journal of Equine Veterinary Science, 78: 69-73. [DOI:10.1016/j.jevs.2019.03.213]
8. Cardoso, R., A. Silva and L. Silva. 2005. Use of the powdered coconut water (ACP-106®) for cryopreservation of canine spermatozoa. Anim Reprod, 2: 257-262.
9. Cordeiro, M., E. Silva, M. Miranda, F. Biondi, S. Santos and O. Ohashi. 2006. The use of coconut water solution (Cocos nucifera) as a holding medium for immature bovine oocytes for in vitro embryo production. Animal Reproduction, 3: 376-379.
10. Daramola, J., E. Adekunle, O. Iyasere, O. Oke, T. Sorongbe, O. Iyanda, A. Kehinde, S. Aluko, I. Olaoye and O. Gbadebo. 2016. Effects of coconut milk alone or supplementation with pyridoxine in tris-extenders on viability of buck spermatozoa during vitrification. Small Ruminant Research, 136: 208-213. [DOI:10.1016/j.smallrumres.2016.02.004]
11. Das, P., A. Choudhari, A. Singh and R. Singh. 2009. Correlation among routine semen parameters, sperm viabilty and malondialdehyde levels in human subjects with different fertility potential. Indian Journal of Physiology and Pharmacology, 53: 253-258.
12. Esterbauer, H. and K.H. Cheeseman. 1990. Determination of aldehydic lipid peroxidation products: Malonaldehyde and 4-hydroxynonenal. Methods in Enzymology, 186: 407-421. [DOI:10.1016/0076-6879(90)86134-H]
13. Evenson, D.P. 2016. The Sperm Chromatin Structure Assay (SCSA®) and other sperm DNA fragmentation tests for evaluation of sperm nuclear DNA integrity as related to fertility. Animal Reproduction Science, 169: 56-75. [DOI:10.1016/j.anireprosci.2016.01.017]
14. Fair, S., J. Hanrahan, A. Donovan, P. Duffy, C. O'Meara, P. Lonergan and A. Evans. 2007. Hormonal relationships during the periovulatory period among ewe breeds known to differ in fertility after cervical artificial insemination with frozen thawed semen. Animal Reproduction Science, 97: 284-294. [DOI:10.1016/j.anireprosci.2006.02.006]
15. Falchi, L., G. Galleri, M. Zedda, S. Pau, L. Bogliolo, F. Ariu and S. Ledda. 2018. Liquid storage of ram semen for 96 h: Effects on kinematic parameters, membranes and DNA integrity, and ROS production. Livestock Science, 207: 1-6. [DOI:10.1016/j.livsci.2017.11.001]
16. Gundogan, M., D. Yeni, F. Avdatek and A. Fidan. 2010. Influence of sperm concentration on the motility, morphology, membrane and DNA integrity along with oxidative stress parameters of ram sperm during liquid storage. Animal Reproduction Science, 122: 200-207. [DOI:10.1016/j.anireprosci.2010.08.012]
17. Jeyendran, R., H. Van der Ven, M. Perez-Pelaez, B. Crabo and L. Zaneveld. 1984. Development of an assay to assess the functional integrity of the human sperm membrane and its relationship to other semen characteristics. Journal of Reproduction and Fertility, 70: 219-228. [DOI:10.1530/jrf.0.0700219]
18. Kasimanickam, R., V. Kasimanickam, C. Thatcher, R. Nebel and B. Cassell. 2007. Relationships among lipid peroxidation, glutathione peroxidase, superoxide dismutase, sperm parameters, and competitive index in dairy bulls. Theriogenology, 67: 1004-1012. [DOI:10.1016/j.theriogenology.2006.11.013]
19. Kasimanickam, R., V. Kasimanickam, A. Tibary and K. Pelzer. 2011. Effect of semen extenders on sperm parameters of ram semen during liquid storage at 4 C. Small Ruminant Research, 99: 208-213. [DOI:10.1016/j.smallrumres.2011.03.057]
20. Khalifa, T. and A. Lymberopoulos. 2013. Changeability of sperm chromatin structure during liquid storage of ovine semen in milk-egg yolk-and soybean lecithin-based extenders and their relationships to field-fertility. Cell and Tissue Banking, 14: 687-698. [DOI:10.1007/s10561-012-9357-6]
21. Layek, S., T. Mohanty, A. Kumaresan and J. Parks. 2016. Cryopreservation of bull semen: Evolution from egg yolk based to soybean based extenders. Animal Reproduction Science, 172: 1-9. [DOI:10.1016/j.anireprosci.2016.04.013]
22. Mohammadi, P., S. Tabatabaei Vakili, M. Mamouei, J. Fayazi and M. Zarei. 2016. Evaluation of the effect of different concentrations of vitamin E and Selenium in Tris extender e on sperm quality of Arabic ram. Research on Animal Production, 7: 99-93 (In Persian). [DOI:10.18869/acadpub.rap.7.13.99]
23. Okolie, P., C. Obi and P. Uaboi-Egbenni. 2011. Fungal spoilage of coconut (Cocos nucifera L.) fruits during storage and the growth differential of isolates on selected amino acids and carbohydrates. Pakistan Journal of Nutrition, 10: 965-973. [DOI:10.3923/pjn.2011.965.973]
24. Oliveira, R., J. Nunes, C. Salgueiro, J. Cavalcante, O. Brasil and A. Moura. 2011. Evaluation of goat spermatozoa frozen in media based on powder coconut water media based (ACP-101®) or TRIS. Arquivo Brasileiro de Medicina Veterinária e Zootecnia, 63: 1295-1302. [DOI:10.1590/S0102-09352011000600003]
25. Phillips, P.H. 1939. Preservation of bull semen. Journal of biological chemistry, 130: 415-415. [DOI:10.1016/S0021-9258(18)73593-X]
26. Purdy, P. 2006. A review on goat sperm cryopreservation. Small Ruminant Research, 63: 215-225. [DOI:10.1016/j.smallrumres.2005.02.015]
27. Revell, S. and R. Mrode. 1994. An osmotic resistance test for bovine semen. Animal Reproduction Science, 36: 77-86. [DOI:10.1016/0378-4320(94)90055-8]
28. Salamon, S. and W. Maxwell. 1995. Frozen storage of ram semen I. Processing, freezing, thawing and fertility after cervical insemination. Animal Reproduction Science, 37: 185-249. [DOI:10.1016/0378-4320(94)01327-I]
29. Salamon, S. and W. Maxwell. 2000. Storage of ram semen. Animal Reproduction Science, 62: 77-111. [DOI:10.1016/S0378-4320(00)00155-X]
30. Salgueiro, C., J. Nunes, K. Oliveira, V. Vieira, J. Gondim and E. Mateos-Rex. 2002. Utilização de diluentes à base de água de coco in natura e em pó, na inseminação artificial programada de cabras. Revista Brasileira de Reprodução Animal, 1: 96-98.
31. Sampaio Neto, J., C. Salgueiro, E. Mateos-Rex and J. Nunes. 2002. Utilização do diluente ACP-105® na refrigeração do sêmen equino. Revista Brasileira de Reprodução Animal, 5: 137-139.
32. Schäfer, S. and A. Holzmann. 2000. The use of transmigration and Spermac™ stain to evaluate epididymal cat spermatozoa. Animal Reproduction Science, 59: 201-211. [DOI:10.1016/S0378-4320(00)00073-7]
33. Tarig, A., H. Wahid, Y. Rosnina, N. Yimer, Y. Goh, F. Baiee, A. Khumran, H. Salman, M. Assi and M. Ebrahimi. 2017. Effect of different concentrations of soybean lecithin and virgin coconut oil in Tris-based extender on the quality of chilled and frozen-thawed bull semen, Veterinary World, 10(6): 672-678. Abstract. [DOI:10.14202/vetworld.2017.672-678]
34. Tarig, A., H. Wahid, Y. Rosnina, N. Yimer, Y. Goh, F. Baiee, A. Khumran, H. Salman and M. Ebrahimi. 2017. Effect of different concentrations of egg yolk and virgin coconut oil in tris-based extenders on chilled and frozen-thawed bull semen. Animal Reproduction Science, 182: 21-27. [DOI:10.1016/j.anireprosci.2017.03.024]
35. Tonieto, R., K. Goularte, G.D.A. Gastal, R.S. Schiavon, J.C. Deschamps and T. Lucia. 2010. Cryoprotectant effect of trehalose and low-density lipoprotein in extenders for frozen ram semen. Small Ruminant Research, 93: 206-209. [DOI:10.1016/j.smallrumres.2010.05.003]
36. Vasconcelos, A.B., A.M.C. Santos, J.S. Oliveira, M. de Albuquerque Lagares and M.M. Santoro. 2009. Purification and partial characterization of proteinase inhibitors of equine seminal plasma. Reproductive Biology, 9: 151-160. [DOI:10.1016/S1642-431X(12)60023-0]
37. Wassall, S.R. and W. Stillwell. 2009. Polyunsaturated fatty acid-cholesterol interactions: domain formation in membranes. Biochimica et Biophysica Acta (BBA)-Biomembranes, 1788: 24-32. [DOI:10.1016/j.bbamem.2008.10.011]
38. Wojtusik, J., M. A. Stoops and T.L. Roth. 2018. Comparison of soy lecithin, coconut water, and coconut milk as substitutes for egg-yolk in semen cryodiluent for black rhinoceros (Diceros bicornis) and Indian rhinoceros (Rhinoceros unicornis). Theriogenology, 121: 72-77. [DOI:10.1016/j.theriogenology.2018.07.042]
39. Yong, J.W., L. Ge, Y.F. Ng and S.N. Tan. 2009. The chemical composition and biological properties of coconut (Cocos nucifera L.) water. Molecules, 14: 5144-5164. [DOI:10.3390/molecules14125144]
40. Zabludovsky, N., F. Eltes, E. Geva, E. Berkovitz, A. Amit, Y. Barak, D. Har-Even and B. Bartoov. 1999. Relationship between human sperm lipid peroxidation, comprehensive quality parameters and IVF outcome. Andrologia, 31: 91-98. [DOI:10.1046/j.1439-0272.1999.00254.x]

بازنشر اطلاعات
Creative Commons License این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است.