دوره 13، شماره 36 - ( تابستان 1401 )
جلد 13 شماره 36 صفحات 113-104 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Najafi A, Daghigh Kia H, Mehdipour M, Mohammadi H. (2022). Improving the Quality of Rooster Sperm during Storage at 4 °C by adding Quercetin in the form of nano-Liposomes and NLC in a Diluting Medium. rap. 13(36), 104-113. doi:10.52547/rap.13.36.104
URL: http://rap.sanru.ac.ir/article-1-1241-fa.html
URL: http://rap.sanru.ac.ir/article-1-1241-fa.html
نجفی ابوذر، دقیق کیا حسین، مهدی پور مهدیه، محمدی حسین. بهبود کیفیت اسپرم خروس طی نگهداری در دمای 4 درجه با افزودن کوئرستین به شکل نانو لیپوزوم و NLC در محیط رقیق کننده پژوهشهاي توليدات دامي 1401; 13 (36) :113-104 10.52547/rap.13.36.104
گروه علوم دام و طیور، پردیس ابوریحان، دانشگاه تهران، تهران، ایران
چکیده: (1447 مشاهده)
چکیده مبسوط
مقدمه و هدف: نرخ باروری پایین اسپرم منجمد طیور در مقایسه با دیگر گونه ها، یک چالش جدی برای تلقیح مصنوعی در گله‌های تجاری است. این چالش ممکن است با برخی ویژگی‌های فیزیولوژیکی اسپرم طیور مرتبط باشد. از طرف دیگر، تنش‌های اسمزی، شیمیایی و مکانیکی طی فرآیندهای سردسازی مهم‌ترین دلایلی هستند که باعث بوجود آمدن تغییرات فراساختاری، بیوشیمیایی و عملکردی در اسپرم می‌شوند که نتیجه آن مجموعهای از پدیدههای آبشاری است که منجر به کاهش باروری اسپرم خواهد شد. ﮐﻮﺋﺮﺳﺘﯿﻦ یﮏ ﺗﺮﮐﯿﺐ زیﺴﺖ ﻓﻌﺎل ﺑﺎ منشأ ﮔﯿﺎﻫﯽ اﺳﺖ ﮐﻪ ﺑﺎ داﺷﺘﻦ ﺳﺎﺧﺘﻤﺎن ﺷﯿﻤﯿﺎیﯽ ﭘﻠﯽ ﻓﻨﻠﯽ دارای ویﮋﮔﯽ آنتی‌اکسیدانی اﺳﺖ. ایﻦ ﺗﺮﮐﯿﺐ بعنوان یﮏ ﻓﻼوﻧﻮیﯿﺪ ﻣﻬﻢ و یﮏ آنتی‌اکسیدان ﻗﻮی ﺑﺎﻋﺚ ﺣﺬف رادیکال‌های آزاد و ﮐﺎﻫﺶ ﺗﻨﺶ اﮐﺴﯿﺪاﺗﯿﻮ در اﺳﭙﺮﻣﺎﺗﻮﮔﻮﻧﯽ جوجه‌ها ﺷﺪ. هدف از این مطالعه، استفاده از کوئرستین به شکل نانو در رقیق کننده اسپرم خروس طی نگهداری در دمای 4 درجه می‌باشد.
مواد و روش ها: بلافاصله پس از جمع‌آوری منی از خروس ها بررسی‌های اولیه صورت گرفت. منی جمع‌آوری شده از هر 15 خروس به منظور حذف اثرات فردی با یکدیگر مخلوط و به محیط رقیق کننده اضافه شدند.. غلظت‌های مختلف کوئرستین (10، 15 و 20 میکرومولار) در سه شکل (غیرمحافظت شده و در داخل ساختارهای لیپوزومی و NLC) به ترکیب رقیق‌کننده پایه اضافه شد. سپس سرد شدن تدریجی نمونه های منی رقیق شده در دمای C ˚ 4 به مدت 3 ساعت انجام گردید. سپس در زمان‌های صفر (بلافاصله پس از رسیدن نمونه‌ها به دمای 4 درجه سانتی گراد)، 24 و 48 پارامترهای جنبایی، یکپارچگی غشایی، پراکسیداسیون لیپیدی، درصد اسپرم‌های غیرطبیعی و درصد زنده‌مانی نمونه ها مورد ارزیابی قرار گرفت.
یافته ها: نتایج بیانگر آن است که تیمارهای آزمایشی تأثیر معنی‌داری بر پارامترهای مورد ارزیابی در زمان صفر نداشته‌اند. در زمان 24 ساعت نگهداری در دمای 4 درجه، 15 میکرومولار ﮐﻮﺋﺮﺳﺘﯿﻦ لودشده در NLC باعث بهبود معنی‌دار پارامترهای جنبایی کل، پیش رونده، زنده‌مانی و یکپارچگی غشای اسپرم در مقایسه با گروه کنترل شد. در زمان 48 ساعت نگهداری در دمای 4 درجه تیمار 15 میکرومولارﮐﻮﺋﺮﺳﺘﯿﻦ لودشده در NLC باعث بهبود معنی‌دار پارامترهای جنبایی کل، پیش رونده، زنده‌مانی و یکپارچگی غشای اسپرم در مقایسه با گروه کنترل میشود. همچنین، نتایج بیانگر آن است که تیمارهای آزمایشی تأثیر معنی داری روی درصد ناهنجاری اسپرم خروس طی نگهداری در دمای 4 درجه در سه زمان 0، 24 و 48 ساعت در مقایسه با گروه کنترل نداشته است. در زمان‌های 24 و 48 ساعت نگهداری در دمای 4 درجه تیمار 15 میکرومولار ﮐﻮﺋﺮﺳﺘﯿﻦ لودشده در NLC باعث کاهش معنی‌دار میزان MDA اسپرم در مقایسه با گروه کنترل شد.
نتیجه گیری: نتایج این آزمایش نشاندهنده آن است که تیمار 15 میکرومولار ﮐﻮﺋﺮﺳﺘﯿﻦ لودشده در NLC باعث بهبود بسیاری از پارامترهای مورد ارزیابی می شود و بنابراین برای استفاده در رقیق‌کننده اسپرم خروس توصیه می گردد.
نتیجه گیری: نتایج این آزمایش نشاندهنده آن است که تیمار 15 میکرومولار ﮐﻮﺋﺮﺳﺘﯿﻦ لودشده در NLC باعث بهبود بسیاری از پارامترهای مورد ارزیابی می شود و بنابراین برای استفاده در رقیق‌کننده اسپرم خروس توصیه می گردد.
نوع مطالعه: پژوهشي |
موضوع مقاله:
فیزیولوژی
دریافت: 1400/7/11 | ویرایش نهایی: 1401/7/11 | پذیرش: 1400/8/23 | انتشار: 1401/7/11
دریافت: 1400/7/11 | ویرایش نهایی: 1401/7/11 | پذیرش: 1400/8/23 | انتشار: 1401/7/11
فهرست منابع
1. Amini, M.R., H. Kohram, A. Zare-Shahaneh, M. Zhandi, H. Sharideh and M.M. Nabi. 2015. The effects of different levels of catalase and superoxide dismutase in modified Beltsville extender on rooster post-thawed sperm quality. Cryobiology, 70: 226-32. [DOI:10.1016/j.cryobiol.2015.03.001]
2. Ben Abdallah, F., N. Zribi and L. Ammar-Keskes. 2011. Antioxidative potential of Quercetin against hydrogen peroxide induced oxidative stress in spermatozoa in vitro. Andrologia, 43: 261-5. [DOI:10.1111/j.1439-0272.2010.01063.x]
3. Blokhina, O., E. Virolainen and K.V. Fagerstedt. 2003. Antioxidants, oxidative damage and oxygen deprivation stress: a review. Annals of Botany, 91: 179-194. [DOI:10.1093/aob/mcf118]
4. Boots, A.W., G.R.M.M. Haenen and A. Bast. 2008. Health effects of quercetin: from antioxidant to nutraceutical. European Journal of Pharmacology, 585: 337-325 [DOI:10.1016/j.ejphar.2008.03.008]
5. Breitbart, H., S. Rubinstein and L. Nass-Arden. 1985. The role of calcium and Ca2+-ATPase in maintaining motility in ram spermatozoa. Journal of Biological Chemistry, 260: 11548-11553. [DOI:10.1016/S0021-9258(17)39066-X]
6. Collodel, G., M.G. Federico, M. Geminiani, S. Martini, C. Bonechi, C. Rossi, N. Figura and
7. E. Moretti. 2011. Effect of trans-resveratrol on induced oxidative stress in human sperm and in rat germinal cells. Reprod Toxicol, 31: 239-46. [DOI:10.1016/j.reprotox.2010.11.010]
8. Cordoba, M., L.N. Pintos and M.T. Beconi. 2007. Heparin and quercitin generate differential metabolic pathways that involve aminotransferases and LDH-X dehydrogenase in cryopreserved bovine spermatozoa. Theriogenology, 67: 648-54. [DOI:10.1016/j.theriogenology.2006.09.041]
9. Davila, S.G., J.L. Campo, M.G. Gil, C. Castano and J. Santiago-Moreno. 2015. Effect of the presence of hens on roosters sperm variables. Poult Sciense, 94: 1645-9. [DOI:10.3382/ps/pev125]
10. Donoghue, A.M. and G.J. Wishart. 2000. Storage of poultry semen. Animal Reproduction Science, 62: 213-232. [DOI:10.1016/S0378-4320(00)00160-3]
11. Farombi, E.O., S.O. Abarikwu, A.C. Adesiyan and T.O. Oyejola. 2013. Quercetin exacerbates the effects of subacute treatment of atrazine on reproductive tissue antioxidant defence system, lipid peroxidation and sperm quality in rats. Andrologia, 45: 256-265. [DOI:10.1111/and.12001]
12. Formica, J.V. and W. Regelson. 1995. Review of the biology of quercetin and related bioflavonoids. Food and Chemical Toxicology, 33: 1061-1080. [DOI:10.1016/0278-6915(95)00077-1]
13. Gibb, Z., T.J. Butler, L.H. Morris, W.M. Maxwell and C.G. Grupen. 2013. Quercetin improves the postthaw characteristics of cryopreserved sex-sorted and nonsorted stallion sperm. Theriogenology, 79: 1001-9. [DOI:10.1016/j.theriogenology.2012.06.032]
14. Jeong, J.H., J.Y. An, Y.T. Kwon, J.G. Rhee and Y.J. Lee. 2009. Effects of low dose quercetin: Cancer cell‐specific inhibition of cell cycle progression. Journal of Cellular Biochemistry, 106: 73-82. [DOI:10.1002/jcb.21977]
15. Khaki, A., F. Fathiazad, M. Nouri, A. Khaki, N.A. Maleki, H.J. Khamnei and P. Ahmadi. 2010. Beneficial effects of quercetin on sperm parameters in streptozotocin‐induced diabetic male rats. Phytotherapy Research, 24: 1285-1291. [DOI:10.1002/ptr.3100]
16. Kothari, S., A. Thompson, A. Agarwal and S.S. du Plessis. 2010. Free radicals: Their beneficial and detrimental effects on sperm function. Indian Journal of Experimental Biology, 48: 425-35.
17. McNiven, M.A. and G.F. Richardson. 2002. Chilled storage of stallion semen using perfluorochemicals and antioxidants. Cell Preservation Technology, 1: 165-174. [DOI:10.1089/153834402765035608]
18. Mehdipour, M., H. Daghigh Kia, G. Moghaddam and H. Hamishehkar. 2018. Effect of egg yolk plasma and soybean lecithin on rooster frozen-thawed sperm quality and fertility. Theriogenology, 116: 89-94. [DOI:10.1016/j.theriogenology.2018.05.013]
19. Mehdipour, M., H.D. Kia, M. Nazari and A. Najafi. 2017. Effect of lecithin nanoliposome or soybean lecithin supplemented by pomegranate extract on post-thaw flow cytometric, microscopic and oxidative parameters in ram semen. Cryobiology, 78: 34-40. [DOI:10.1016/j.cryobiol.2017.07.005]
20. Mieusset, R. 2011. Malformations urogénitales: rapport de l'Institut de veille sanitaire sur les cryptorchidies et hypospadias opérés en France chez les garçons de moins de sept ans. Basic Clin Androl, 21: 167. [DOI:10.1007/s12610-011-0141-4]
21. Moretti, E., L. Mazzi, G. Terzuoli, C. Bonechi, F. Iacoponi, S. Martini, C. Rossi and G. Collodel. 2012. Effect of quercetin, rutin, naringenin and epicatechin on lipid peroxidation induced in human sperm. Reproductive Toxicology, 34: 651-657. [DOI:10.1016/j.reprotox.2012.10.002]
22. Najafi, A., H.D. Kia, M. Mehdipour, H. Hamishehkar and M. Álvarez-Rodríguez. 2020. Effect of quercetin loaded liposomes or nanostructured lipid carrier (NLC) on post-thawed sperm quality and fertility of rooster sperm. Theriogenology, 152: 122-128. [DOI:10.1016/j.theriogenology.2020.04.033]
23. Najafi, A., H.D. Kia, H. Mohammadi, M.H. Najafi, Z. Zanganeh, M. Sharafi, F. Martinez-Pastor and H. Adeldust. 2014. Different concentrations of cysteamine and ergothioneine improve microscopic and oxidative parameters in ram semen frozen with a soybean lecithin extender. Cryobiology, 69: [DOI:10.1016/j.cryobiol.2014.05.004]
24. Najafi, A., H. Daghigh Kia, M. Mehdipour, M. Shamsollahi and D.J. Miller. 2019. Does fennel extract ameliorate oxidative stress frozen-thawed ram sperm? Cryobiology, 87: 47-51. [DOI:10.1016/j.cryobiol.2019.02.006]
25. Nass‐Arden, L. and H. Breitbart. 1990. Modulation of mammalian sperm motility by quercetin. Molecular Reproduction and Development, 25: 369-373. [DOI:10.1002/mrd.1080250410]
26. Noiles, E.E., K.A. Thompson and B.T. Storey. 1997. Water permeability, Lp, of the mouse sperm plasma membrane and its activation energy are strongly dependent on interaction of the plasma membrane with the sperm cytoskeleton. Cryobiology, 35: 79-92. [DOI:10.1006/cryo.1997.2033]
27. Russo, M., C. Spagnuolo, I. Tedesco, S. Bilotto and G.L. Russo. 2012. The flavonoid quercetin in disease prevention and therapy: facts and fancies. Biochemical Pharmacology, 83: 6-15. [DOI:10.1016/j.bcp.2011.08.010]
28. Safa, S., G. Moghaddam, R.J. Jozani, H.D. Kia and H. Janmohammadi. 2016. Effect of vitamin E and selenium nanoparticles on post-thaw variables and oxidative status of rooster semen. Anim Reprod Science, 174: 100-106. [DOI:10.1016/j.anireprosci.2016.09.011]
29. Silva, E.C., J.F. Cajueiro, S.V. Silva, P.C. Soares and M.M. Guerra. 2012. Effect of antioxidants resveratrol and quercetin on in vitro evaluation of frozen ram sperm. Theriogenology, 77: 1722-6. [DOI:10.1016/j.theriogenology.2011.11.023]
30. Surai, P., I. Kostjuk, G. Wishart, A. Macpherson, B. Speake, R. Noble, I. Ionov and E. Kutz. 1998. Effect of vitamin E and selenium supplementation of cockerel diets on glutathione peroxidase activity and lipid peroxidation susceptibility in sperm, testes, and liver. Biological trace element research, 64: 119-132. [DOI:10.1007/BF02783329]
31. Zribi, N., N.F. Chakroun, F.B. Abdallah, H. Elleuch, A. Sellami, J. Gargouri, T. Rebai, F. Fakhfakh and L.A. Keskes. 2012. Effect of freezing-thawing process and quercetin on human sperm survival and DNA integrity. Cryobiology, 65: 326-331. [DOI:10.1016/j.cryobiol.2012.09.003]
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
